镇癌灵抑制胃癌细胞生长的体外实验研究
世界华人消化杂志 1999年第11期第7卷 研究原著
作者:肖冰 肖丽春 赖卓胜 张亚历 张振书 张万岱
单位:肖冰 赖卓胜 张亚历 张振书 张万岱 中国人民解放军第一军医;肖丽春 大学南方医院消化内科 广东省广州市 510515 福州市第二人民医院中医科 福建省福州市 350007
关键词:镇癌灵/药理学;细胞凋亡;胃肿瘤
摘要 目的 观察自拟治癌方剂镇癌灵诱导胃癌细胞凋亡和抑制胃癌细胞体外生长的效应,为临床应用与新药开发奠定实验基础.
方法 镇癌灵是由马钱子、三棱、红根地覃、白花蛇舌草等10余种中药、草药、植物组成的药方.将镇癌灵按成人每天正常使用剂量500 g(即10 g/ kg体重),常规煎熬浓缩成500 mL汤液,4℃冰箱冷却,0.22 μm滤膜过滤除菌,以消毒的玻璃离心管分装成每支5 mL,-20℃冰箱储存备用.根据抗癌药物敏感性实验的方法,计算出体外药物敏感性实验所用药物的一般浓度为5 g/ L,即在含10%小牛血清的RPMI1640完全培养基中加入5 mL/ L的过滤汤剂为中剂量,0.5 mL/ L和50 mL/ L分别为低剂量和高剂量,常规培养SGC7901胃癌细胞,3 d换液一次. 根据直接记数法和MTT显色法检测细胞生长曲线与细胞增殖实验的同时,每隔36 h收集细胞进行细胞涂片染色及提取细胞基因组DNA电泳. 结果 生长曲线表明,经高、中、低剂量镇癌灵作用的胃癌细胞实验组的对数生长期分别为3 d~6.5 d,3 d~7 d,3 d~7.5 d,细胞倍增时间各为3 d,2.5 d,2.5 d;而非空白对照组细胞对数生长期为2 d~8 d,倍增时间为2 d. mTT显色法结果提示,高、中、低不同剂量实验组的细胞增殖速度或增殖指数以及细胞存活率均明显低于非实验组,差异均有非常显著性意义(P<0.001).实验组细胞刷片染色显示有明显的细胞核固缩、核周边染色质加深、核断裂、凋亡小体现象,细胞DNA电泳可见梯状条带的凋亡特征,而空白对照组无此现象. 结论 自拟方剂镇癌灵含有解毒、消肿、镇痛、化痰、活血、益气、生津、降火等多种功效;从本实验结果表明,具有明显抑制体外培养胃癌细胞生长增殖的作用,其作用机制可能与镇癌灵能诱导胃癌细胞发生显著凋亡的作用有关.
中国图书馆分类号 R 735.2
Experimental study of the inhibition affect of Zhen'ailing on the growth of gastric cancer in vitro
XIAO Bing1, XIAO Li-Chun2, LAI zhuo-Sheng1, ZHANG Ya-Li1, ZHANG Zhen-Shu1 and zHANG Wan-Dai11Institute for Digestive Disease, Nanfang Hospital, The First military Medical University, Guangzhou 510515, Guangdong Province, China2Department of Traditional Chinese Medicine, The Second People's hospital, Fuzhou 350007, Fujian Province, China
Subject headings Zhen'ailing/pharmacology; apoptosis; stomach neoplasm
Abstract AIM To investigate apoptosis and growth inhibition effect of gastric carcinoma cell in vitro induced by the formulae Zhen'ailing made by ourself, and establish the experimental basis for clinical application and development of new drugs. METHODS Zhen'ailing was composed of more than ten types of Chinese herbal medicine and plants including Vomiting nut (马钱子), Burreed tuber (三棱), Sage (红根地覃), oldenlandia (白花蛇舌草), et al. Zhen'ailing was decocted and concentrated in 500 mL decoction according to the normal dosage of 500 g (10 g/ kg body weight) used for adults, cooled at 4℃; bacteria were filtered by 0.22μm filtration membrane, then it was put into 5 mL glass tube, stored at -20℃ refrigerator. The concentration of this formulae was divided into high, moderate and low dose, added by this decoction of 50 mL/ L, 5 mL/ L, 0.5 mL/ L respectively. In the anti-tumor drug's sensitive test in vitro SGC7901 stomach carcinoma cell was cultured in this complete medium. The growth curve and proliferation of cells were detected by MTT test and direct counting method, simultaneously cells were collected, smeared and stained, the genomic DNA was extracted for gel electrophoresis once every 36 hours. RESULTS The growth curve indicated that the logarithmic growth phase of the experimental group of stomach carcinoma cells were 3 d-6.5 d, 3 d-7 d, 3 d-7.5 d, respectively by high, moderate and low dose of Zhen'ailing, but the control group was 2 d-8 d and the doubling time was 2 d. The results of MTT test showed the cell proliferation rate or proliferation index and survival rate of experimental group by high, moderate and low dose of Zhen'ailing were lower than control group. There was significant difference between the two groups (P<0.01). the staining of brush cells of experimental group showed nuclear shrinkage, margination, nuclear fragmentation and formation of apoptotic bodies, and the characteristic ladder band on gel electrophoresis. NO changes were observed in control group. CONCLUSION Zhen'ailing has multiple functions including promoting blood circulation, promoting salivation, removing heat, supplementing qi. The results of this experiment showed that the proliferation of stomach carcinoma cells cultured in vitro was inhibited by this formulae Zhen'ailing and the mechanism was probably associated with the induction of apoptosis of stomach carcinoma cells.
0 引言
镇癌灵是根据闽西民间用于治疗消化道肿瘤的验方加减制作而成的汤剂.为了证实这一药物的抗癌效应及探讨其作用机制,我们观察了这一汤剂对体外培养的胃癌细胞生物学行为的影响.
1 材料和方法
1.1 镇癌灵汤剂 由马钱子、三棱、红根地覃、白花蛇舌草、虎杖、鳖甲、牡蛎、半枝莲等10种中药、草药、植物组成的药方,患者每天正常使用剂量共500 g(即10 g/ kg体重),常规煎熬浓缩成500 mL汤液,4℃冰箱冷却,0.22μm滤膜过滤除菌,以消毒的玻璃离心管分装成每支5 mL,-20℃冰箱储存备用.
1.2 细胞与试剂 SGC7901胃癌细胞由本所保存细胞,RPMI1640、胎牛血清、MTT、琼脂糖、蛋白酶k、限制性内切酶EcoRⅠ、DMSO、平衡酚、RNase a、Tris碱等分别购于Sigma公司和Promega公司.
1.3 细胞培养与药物应用 根据抗癌药物敏感性实验的方法[1],计算出体外药物敏感性实验所用药物的一般浓度为5 g/ L,即在含10%小牛血清的RPMI1640完全培养基中加入5 mL/ L的过滤汤剂为中剂量,0.5 mL/ L和50 mL/ L分别为低剂量和高剂量,常规培养SGC7901胃癌细胞,3 d换液一次.
1.4 细胞生长曲线测定 取生长状态良好的细胞,采用一般传代方法进行消化,制成细胞悬液.经记数后,精确地按1×104 cells分别接种于24孔培养板内,共接种8个24孔板,分成非诱导组、低剂量组、中剂量组、高剂量组,每孔培养液为1 mL. 每天各组细胞取4~5孔细胞进行计数,并计算均值. 共记数10 d,以培养时间为横轴,细胞数(对数)为纵轴,描绘曲线.
1.5 MTT法细胞增殖实验 0.25%胰蛋白酶消化SGC7901细胞,用含10%胎牛血清的RPMI1640制成细胞悬液,以每孔2×103 cells接种于96孔板中,每孔培养液200 μL. 各组细胞均分别按48 h,72 h,96 h,120 h培养后,每孔加入MTT溶液(5 g/ L)20 μL,37℃,继续孵育4 h,终止培养,小心吸弃孔内培养上清液. 每孔加入150 μL DMSO,振荡10min,使结晶物充分溶解.选择490 nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值.以时间为横轴,光吸收值为纵轴绘制细胞增殖曲线.并计算细胞存活率(实验组吸光值/ 对照组吸光值×100%).
1.6 细胞扒片与HE染色[2] 将高压消毒的玻片置于大小为120 mm的培养皿内,加入细胞悬液,基本培养条件与分组同上.同时,每组细胞均加入1.25 μmol/ L的VM26,培养24 h,然后撤去VM26,继续以镇癌灵和完全培养基培养细胞36 h,取出细胞扒片,2.5%戊二醛固定细胞,常规染色、洗片、复染、脱水、透明、封片,显微镜下观察细胞形态.
1.7 细胞基因组DNA提取与电泳[3] 各组细胞在培养瓶内生长过程中,由于诱导剂的作用,部分细胞可逐渐发生死亡,不能贴壁,浮于培养液中.每天将培养上清离心后收集细胞,当收集至约有1×106细胞时,加入细胞变性液(含100 mg/ L蛋白酶k,100 mmol/ L Tris-Cl,15 mmol/ L NaCl, 10 mmol/ L EDTA, 0.4% sDS)400 μL,混匀,37℃保温18 h,平衡酚与氯仿抽提二次,取上清,加入1/10体积3 mol/ L乙酸钠(pH 5.2)和2.5倍体积无水乙醇,离心沉淀.用含20 g/ L RNase A的TE缓冲液100 μL溶解DNA. 1%普通琼脂糖常规上样电泳(100V,1 h). 暗室紫外线透射仪观察电泳结果.
2 结果
2.1 细胞生长曲线 各组细胞生长曲线结果见图1,非诱导株的细胞最大增殖数约为1.1×105,对数生长期在2 d~8 d之间,细胞倍增时间为2 d.高、中、低剂量诱导株最大增殖数各为3.8×104,5.3×104,6.6×104,对数生长期分别在3 d~6.5 d,3 d~7 d,3 d~7.5 d,细胞群体倍增时间依次为3 d,2.5 d,2.5 d. 可见诱导株滞留期较长,生长期短,较早出现平台期.
图1 细胞生长曲线.
2.2 细胞增殖实验 以MTT显色法检测96孔板细胞在不同时间的吸光值及其与时间的相关曲线见图2,诱导株曲线平滑,上升缓慢.根据存活细胞数量与吸光值呈正比的原理,按公式计算得知高、中、低剂量的诱导株细胞存活率分别为50%,65%和78%.说明诱导株的增殖速度和分裂指数均明显低于非诱导株.
图2 MTT法细胞增殖实验.
2.3 胃癌细胞凋亡诱导结果 仅以1.25μmol/ L VM26作用的非诱导株细胞,扒片染色后在显微镜下细胞形态完整,细胞核无异常,未见任何细胞凋亡的特征.而在同剂量VM26作用的基础上,以高、中剂量的镇癌灵诱导胃癌细胞时,在显微镜下可见核固缩、核染色质周边聚集、核断裂及典型的凋亡小体等细胞凋亡的形态学特征(图3).经高、中剂量的明显的镇癌灵诱导后死亡的胃癌细胞,其核内DNA电泳结果出现了明显的梯状条带,而非诱导株和低剂量诱导细胞未见有DNA ladder现象(图4).
图3 镇癌灵诱导细胞凋亡的光镜下结果.
a. 高剂量组诱导细胞; B. 中剂量组诱导细胞;C.低剂量组诱导细胞
图4 凋亡细胞DNA电泳结果.
a. 非诱导株/ EcoRⅠ; B. 高剂量组诱导细胞; C.中剂量组诱导细胞; D. 低剂量组诱导细胞
3 讨论
程序化细胞死亡(PCD)是不同于坏死且受基因指导的主动性细胞自我消亡过程,为生物体一种与细胞有丝分裂相反的方式去调节细胞群体相对衡定的重要方式.近年来,认为细胞凋亡过程的抑制、凋亡调节基因的紊乱导致细胞凋亡抑制蛋白的增加或凋亡促进因子的减少,是肿瘤形成的另一重要机制.因此,提出诱导肿瘤细胞的凋亡来治疗肿瘤,是肿瘤治疗上的一个突破[4].胃癌的发生过程,涉及到多种癌基因的激活(如met, c-myc, c-erb-2, H-ras等)及抑癌基因的失活(如p53, p16, Rb, nm23, APC等),从而使细胞增殖与分化异常,同时也有细胞凋亡的异常[5]. ishida et al[6]对胃癌手术标本进行连续病理切片,发现正常胃粘膜凋亡细胞很少,胃炎及肠化区凋亡细胞增多,胃癌组织的细胞凋亡率明显低于胃粘膜不典型增生区及肠化区,而增殖指数明显高于后两者,表明胃癌的形成和浸润、转移,与细胞凋亡减少,癌细胞生成期延长,细胞大量积聚有重要关联. okuyama et al[7]通过研究早期胃癌与腺瘤的区别,发现胃癌的增殖指数以及增殖指数/凋亡指数之比均高于腺瘤,提示细胞凋亡参与胃癌的发病过程. kasagi et al研究发现,分化好的胃癌细胞其细胞凋亡率明显高于分化差的胃癌细胞,早期胃癌细胞的凋亡率高于晚期胃癌,从而认为细胞凋亡与胃癌的分级和预后有关.因此,通过诱导胃癌细胞的凋亡,探讨胃癌治疗的手段,具有重要意义.关于诱导胃癌细胞凋亡的研究较少. Yanagihara et al应用γ-射线诱导7株胃上皮肿瘤细胞凋亡的结果发现,细胞凋亡率与射线作用时间和剂量呈正比,其中一株细胞以γ-射线照射12 h后,细胞凋亡开始增加,72 h~96 h达到高峰. Vollmers et al报道应用一株抗人胃癌单克隆抗体SC-1,能抑制体外培养和软琼脂中肿瘤细胞的生长,并抑制裸鼠抑制瘤的生长,对其作用机制研究表明,主要通过诱导细胞凋亡而实现. yanamoto et al研究发现TGFβ1通过TGF受体的介导可诱导p53缺失的胃癌细胞凋亡.随着凋亡相关基因的不断发现与克隆,利用基因转导技术诱导肿瘤细胞的凋亡,倍受人们的关注.但由于基因转导技术难度大,影响因素多,有效性差,离临床应用遥远.因此,寻求通过化学药物、植物、中医药等手段诱导肿瘤细胞凋亡的研究,得到了较高的重视.而化疗药物的多药耐药现象与骨髓抑制作用,又给临床带来了极大的困惑[8].因而,中医药的开发与研究成为发展趋势与必然结果.镇癌灵虽然只是民间悬壶的验方,而最早的祖国医学也源于经验之学,而且笔者曾亲自作过较为认真的跟踪,发现其有效性不容否认,个别病例具有5年,甚至10年以上的生存效果.从组方上分析,镇癌灵中含解毒、消肿、镇痛、化痰、活血、益气、生津、降火等多种功效,配方科学,功用齐全,主次分明,为其有效的治疗奠定了可靠的依据.
通讯作者 肖冰,510515,广东省广州市同和镇,中国人民解放军第一军医大学南方医院消化内科
作者简介:肖冰,男,1962-09-12生,医学博士,副教授,消化内科专业.1984年毕业于福建中医学院,获医学学士学位. 1996年毕业于第一军医大学,获医学博士学位.研究方向为肿瘤基因治疗及肿瘤基因的克隆.
Correspondence to:XIAO Bing, Institute of digestive Disease, Nanfang Hospital, The First Military Medical University, guangzhou 510515, Guangdong Province, China
tel. +86·20·85141544
4 参考文献
1 司徒镇强,吴军正. 细胞培养. 第1版.西安:世界图书公司,1996;4:100-200
2 Loulse M, Desjardens JP, Macmanus. An adherent cell model to study different stages of apoptosis. Exp Cell Res, 1995;216:380-391
3 Itoh N, Tsujimoto S, Nagada. Effect of Bcl-2 on Fas antigen-mediated cell death. J Immu, 1993;151:621-627
4 Kerr JFR, Wintertord CM, Harmon BV. Apoptosis: its significance in cancer and cancer therapy. Cancer, 1994;73:2013-2024
5 Tahra E. Molecular mechanism of stomach carinogenesis. J Cancer Res Clin Oncol,1993;119:265-271
6 Ishida M, Gomyo Y, Tatebe S. Apoptosis in human gastric mucosa, chronic gastritis, dysplasia and carcinoma: analysis by TUNEL. Virchows Arch,1996;428:229-235
7 Okuyama S, Yokota K, Yuki M. Cell proliferation and cell death (Apoptosis) in epithelial tumors of the stomach analysis of tumor tissues by endoscopic muscol resction. Nippon Shokakibyo Gakkai Zassshi, 1995;92:130-131
8 Van-Waardenburg RC, Meijer C, Burger H, Nooter K, De-Vries EG, Mulder NH, De-Jong s. Effects of an inducible anti-sense c-myc gene transfer in a drug-resistant human small-cell-lung-carcinoma cell line. Int J Cancer, 1997;14:73:544-550
收稿日期 1999-07-03