IL-6在诱导M1白血病细胞分化后凋亡中的作用

免疫学杂志 2000年第1期第16卷 基础免疫学

作者：张纪岩　沈倍奋　王建安　张学敏

单位：张纪岩（军事医学科学院基础医学研究所，北京 100850)； 沈倍奋（军事医学科学院基础医学研究所，北京 100850)； 王建安（军事医学科学院基础医学研究所，北京 100850)； 张学敏(国家生物医学分析中心，北京 100850）

关键词：IL-6；M1；凋亡；Bcl-2／Bax

　　摘　要：目的　探讨IL-6能否诱导M1小鼠急性髓样白血病细胞凋亡及其分子机制。方法　透射电镜观察细胞形态判断有无凋亡发生；RT-PCR及狭缝杂交分析bcl-2家族成员表达水平的改变。结果　IL-6诱导M1细胞向巨噬细胞方向分化后，M1细胞发生凋亡；bcl-2、bcl-X_L在IL-6诱导下表达下调，bax表达上调。结论　IL-6诱导Bcl-2／Bax比例改变，使M1细胞分化后凋亡。

　　中图分类号：R392.11　　文献标识码：A

Apoptosis of M1 cells is induced by IL-6 after the cells undergo diffe-rentiation and its molecular mechanism

ZHANG Ji-yan　SHEN Bei-fen　WANG Jian-an

　　（Institute of Basic Medical Science，Academy of Military Medical Science，Beijing 100850，China)

　　ZHANG Xue-min

　　(National Center of Biomedical Analysis，Beijing 100850，China）

　　Abstract：Objective To investigate whether and how IL-6 can induce apoptosis of M1 myeloid leukemic cells．Methods We determined the role of IL-6 in apoptosis of M1 cells with transmission electron micrograph．We also detected the effect of IL-6 on the expression level of bcl-2 family．Results IL-6 could induce apoptosis of M1 cells after the cells underwent terminal differentiation．The molecular mechanism might be that IL-6 downregulated expression of bcl-2 and bcl-X_L，but up-regulated that of bax．Conclusion IL-6 makes the ration of Bcl-2／Bax change，which results in apoptosis of M1 cells．

　　Key words：IL-6；M1；apoptosis；Bcl-2／Bax▲

　　IL-6一贯被看作是凋亡抑制因子，它可抑制TGF　β1、某些细胞毒化合物、野生型P53诱导的急性髓系白血病细胞凋亡^［1］。在IL-6依赖株中，IL-6表现出更明确的抗凋亡效应——细胞在撤去IL-6后大量凋亡，其机制可能为JAK-STATs通路激活后诱导bcl-X_L表达；高水平表达外源bcl-2基因能抑制IL-6饥饿的B9骨髓瘤细胞凋亡^［2］。然而，由于IL-6生物学效应的多样性与双向性，细胞也可表现出不同甚至相反的效应。IL-3与IL-6联合预处理显著增强4-HC（4-hydroperoxycyclophosphamide）诱导的HL-60细胞凋亡，其机制可能为预处理增强了4-HC所致的HL-60细胞bcl-2、c-myc基因表达下调^［3］。与此一致的是，我们在以M1细胞为模型的研究中发现：10～100ng／ml　rhIL-6处理4～5d后，M1细胞表现出明确的凋亡特征。由于M1细胞中野生型P53缺如，我们检测了rhIL-6处理前后bcl-2家族成员bcl-2、bax、bcl-X的表达情况，探讨M1细胞在rhIL-6处理后走向调亡的可能机制。

　　1　材料和方法

　　1.1　材料

　　1.1.1　细胞：M1细胞由本所王嘉玺教授惠赠，培养于10％FCS-1640中，每2～4d传代1次。

　　1.1.2　试剂：rhIL-6（溶于含0.1BSA的PBS中）的比活性为10⁷U／mg，AMV逆转录酶、Taq酶、BCIP、NBT等购自Promega公司。

　　1.1.3　探针及引物：含bcl-2、bax　cDNA的质粒由本室保存。bcl-X引物^［4］序列如下：

　　P5：5’-GTGAGTGGACGGTCAGTG-3’

　　P3：5’-TTGGACAATGGACTGGTTGA-3’

　　1.2　方法

　　1.2.1　rhIL-6对M1细胞增殖影响的检测：将M1细胞调成5×10⁴／ml的密度，植入24孔板，每孔1ml，加0，1，10μg／ml　rhIL-6各10μl（n＝2），37°C孵箱培养，每日计数。

　　1.2.2　墨汁吞噬试验：将不同剂量rhIL-6处理0、1、2、3、4d的M1细胞用冰冷PBS洗2次后，调细胞密度为5×10⁵／ml，每0.1ml加入滤纸滤过的优质墨汁10μl。37°C温育30min或4h，洗去游离墨粒，甩片，Wright’s染色，油镜下计数胞浆中吞有大小墨粒5个以上的阳性细胞。

　　1.2.3　DNA抽提：100ng／ml　rhIL-6处理后，于不同时间（0、1、2、3、4d）各取M1细胞约10⁶，PBS洗2次后，移入1.5ml微量离心管中，离心去上清：加0.5ml裂解液（1g／L蛋白酶K；10mmol／L　Tris-C1，pH8.0；150mmol／L　NaCl；10mmol／L　EDTA；0．4％SDS）重悬细胞，50°C过夜，不时振摇。加等体积酚抽提几次后，乙醇沉淀。沉淀溶于100μl　TE（pH8．0）中，加RNase至终浓度0.5g／L，37°C保温30min后，1.5％琼脂糖凝胶电泳，观察结果。

　　1.2.4　Wright’s染色及透射电镜观察细胞形态：按常规方法进行。

　　1.2.5　RNA提取及RT-PCR：采用SDS／酚法提取细胞总RNA，OD₂₆₀／OD₂₈₀检测RNA完整性并定量。然后按下述方法进行RT-PCR，在0.5ml微量离心管中依次加入：2.5mmol／L　dNTP　2．0μl，5×RT缓冲液2.0μl，RNasin　1U，随机引物100ng，RNA　1.0μg，AMV　2U，用DEPC水补足体积至10μl。混匀，室温10min，42°C　60min，95°C　5min，骤冷。分别取反转录产物1.0μl、3．0μl作为模板，在25μl体系中（含2.5μl　10×PCR缓冲液，2.0μl　2．5mmol／L　dNTP，20μmol／L　P5、P3各1.0μl，Taq酶1U）扩增GAPD和bcl-X。94°C　1min、60°C　1min、72°C　1min，共35个循环，72°C延伸7min。最后取5μl　PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳。

　　1.2.6　探针制备及狭缝杂交：含有bcl-2、bax　cDNA的质粒经PstI、BamHI双酶切鉴定正确后，回收345bp、222bp片段，按光敏生物素试剂盒说明书进行光敏生物素标记及狭缝杂交。

　　2　结果

　　2.1　rhIL-6对M1细胞生长、分化的影响　rhIL-6明显抑制M1细胞增殖，使M1细胞饱和密度下降（见图1）。在生长停止的同时，M1细胞也恢复了终末分化，获得很强的墨汁吞噬能力，10～100ng／ml　rhIL-6处理4d时，墨汁吞噬试验呈阳性的细胞达95％以上，且在30min内吞噬即达高峰，与4h无明显差异,表明M1向巨噬细胞方向分化（见图2）。

图1 rhIL-6对M1细胞生长的影响

　　Fig1 Effect of rhIL-6 on the growth of M1 cells

　　A：normal control；B：incubation with 10ng／ml rhIL-6；C：incubation with 100ng／ml rhIL-6

图2　rhIL-6对M1细胞吞噬功能的影响

　　Fig2　Effect of rhIL-6 on the phagocytic activity of M1 cells（Wright’s staining，×1000）

　　A：normal control；B：incubation with 100ng／ml rhIL-6 for 4d

　　2.2　rhIL-6诱导M1细胞分化后凋亡　M1向巨噬细胞分化后，在rhIL-6诱导下走向凋亡。100ng／ml　rhIL-6处理4d后，M1细胞Wright’s染色可见类似凋亡小体的结构（见图3）。且细胞DNA呈典型的梯状ladder（见图4）。由于DNA梯状ladder不能作为区分坏死与凋亡的特征性标志，我们又取10ng／ml、100ng／ml处理4～5d的细胞做了透射电镜观察。电镜下可见10ng／ml、100ng／ml处理4～5d时，约有10％ 的细胞呈现凋亡各期的典型形态特征：染色质核膜下凝聚呈帽状、块状或月牙状，胞浆固缩，内质网扩张，胞浆空泡化——胞核及细胞外形皱缩，核裂解成质膜包绕的团块，即凋亡小体，电镜下凋亡小体的存在是确认凋亡发生最可靠的依据。对照组则没有上述特征的细胞，说明凋亡确由rhIL-6诱导产生。

图3　100ng／ml rhIL-6作用前后M1细胞的形态变化

　　Fig3　Morphological changes of M1 cells induced by 100ng／ml rhIL-6

　　A，C：normal control；B，D，E，F：incubation with rhIL-6 for 4d；A，B：wright’s staining（×1000）；C，D，E，F：trans-mission electron micrograph

图4　100ng／ml rhIL-6作用前后M1细胞DNA的琼脂糖凝胶电泳

　　Fig4　1.5％ agarose gel electrophoresis of DNA samples from M1 cells treated with or without 100ng／ml rhIL-6

　　2.3　凋亡的可能机制为Bcl-2／Bax比例下降　为探讨M1细胞分化后凋亡的可能机制,我们以bcl-2、bax　cDNA为探针，检测了10ng／ml　rhIL-6处理不同时间bcl-2、bax　mRNA表达水平的改变。首先用PstI、BamH1双酶切鉴定了含bcl-2与bax　cDNA的质粒，分别切出了345bp与222bp的片段，与预测相符，证实所用质粒正确。接着回收了这两个片段，按光敏生物素试剂盒说明书进行光敏生物素标记，提取细胞总RNA，进行狭缝杂交。结果表明，10ng／ml　rhIL-6处理6h后，bcl-2表达即明显减低，12～24h达最大抑制；而bax的表达水平则呈上升趋势（见图5），bax表达的改变于24h时开始出现，到48h更强。

图5　狭缝杂交检测10ng／ml rhIL-6处理前后M1细胞中bcl-2、bax表达水平的改变

　　Fig5　Changes of expression of bcl-2 and bax are induced by rhIL-6．

　　A：Blot hybridization analysis of bcl-2 and bax expression in

　　10ng／ml rhIL-6-treated M1 cells

　　B：The hybridization signals were quantified by densitometry scanning

　　and expressed as the　ratios of bcl-2 to GAPD and bax to GAPD

　　as a function of time of IL-6 treatment．

　　我们还采用半定量RT-PCR的方法检测了M1细胞中，10ng／ml rhIL-6处理前后bcl-2家族另两个成员bcl-X_L与bcl-Xs表达的改变。bcl-X_L与bcl-Xs是同一基因的不同转录本，据报道，我们采用的引物若扩增出0.8Kb的片段，即代表bcl-X_L；若扩增出0.6Kb的片段，则代表bcl-Xs。结果我们仅扩增出了0.8Kb的片段，未扩出0.6Kb的片段，说明细胞不表达bcl-Xs，而bcl-X_L的表达水平在处理后明显减低（见图6）。

图6　RT-PCR检测10ng／ml rhIL-6处理前后M1细胞中bcl-X表达水平的改变

　　Fig6　RT-PCR analysis of bcl-X expression in 10ng／ml rhIL-6-treated M1 cells

　　1～4：GAPD；5：DL2000；6～9：bcl-X；1，6：negative control；2，7：incubation with rhIL-6 for 0d；3，8：incubation with rhIL-6 for 1d；

　　4，9：incubation with rhIL-6　for 2d

　　3　讨论

　　bcl-2家族与凋亡密切相关，其中bcl-2、bcl-X_L等家族成员为凋亡抑制基因，而bax、bcl-Xs等为凋亡促进基因。目前认为Bcl-2／Bax比例决定细胞命运；Bcl-2与Bax可形成异源二聚体，此异源二聚体表现为抗凋亡效应；但若Bax过量，Bax则形成同源二聚体，促进细胞凋亡^［5］。Bcl-X_L与Bcl-2相似，亦可与Bax形成异源二聚体，有很强的抗凋亡效应，而Bcl-Xs则恰好相反，它优先与Bcl-2形成二聚体，使Bax倾向于形成同源二聚体，促进凋亡^［4］。从我们的结果来看，由于IL-6处理后M1细胞中bcl-2、bcl-X_L表达下调，bax表达上调，而bcl-Xs在M1细胞中不表达，故Bcl-2／Bax比例下降，Bax同源二聚体增加，细胞走向凋亡。由于凋亡发生在向巨噬细胞分化后，故我们称之为“分化后凋亡”。凋亡也部分地解释了IL-6处理后M1细胞饱和密度下降的原因。

　　然而我们的结果与Yonish等的报道却似乎是矛盾的。1991年，Yonish等报道在野生型P53蛋白缺失的M1细胞中表达外源P53蛋白致细胞凋亡，而IL-6可抑制野生型P53蛋白诱导的凋亡^［6］。为什么IL-6在野生型P53蛋白存在时抑制凋亡发生，而在野生型P53蛋白缺如时又可诱导凋亡？其机制我们一无所知。但我们可以推测：IL-6抑制P53下游分子的表达，从而拮抗了野生型P53蛋白所致的细胞凋亡；在野生型P53缺如的情况下，这种拮抗效应体现不出来，而IL-6对bcl-2家族的影响使细胞走向凋亡。

　　尽管M1细胞的凋亡机制我们还不大清楚，但IL-6诱导M1细胞生长停止、向巨噬细胞方向分化、乃至最终凋亡的意义却是明确的。深入研究IL-6对白血病细胞的生物学效应，对于探讨白血病的发病机制、研究IL-6信号转导机制及细胞分化凋亡机制都有重要意义。

　　作者简介：张纪岩（1972-），女，黑龙江人，博士生，主要从事细胞因子受体的研究。

　　参考文献：

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收稿日期：1999-03-16

修回日期：1999-09-30