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大蒜油对小鼠腹水型宫颈癌细胞及其DNA聚合酶α活性的影响

大蒜油对小鼠腹水型宫颈癌细胞及其DNA聚合酶α活性的影响

中药新药与临床药理 1999年第5期第10卷 药效与毒理学研究

作者:陈双厚 吴志奎 黄霞珍 谢锦玉 刘铭福

单位:陈双厚 吴志奎 黄霞珍(中国中医研究院广安门医院,北京100053);谢锦玉 刘铭福(中国中医研究院基础研究所,北京100700)

  关键词: 大蒜油;腹水型宫颈癌细胞;药物作用;DNA聚合酶α;药物作用

  摘要:在证明大蒜油具有明显提高小鼠抑瘤率实验研究的同时,应用DNA聚合酶活性测定技术检测了小鼠腹水型宫颈癌细胞DNA聚合酶α活性。结果发现大蒜油能使腹水型宫颈癌细胞DNA聚合酶α活性降低,提示其可能是通过阻滞癌细胞DNA的合成和复制,起到抑制癌细胞增殖的作用。

  中图分类号:R285.5;R730.52  文献标识码:A  文章编号:1003-9783(1999)05-0286-02

  大蒜油是我国民常用食品,具有很强的抑菌杀菌作用。民间作为药用已有几千年的历史,近年来国内外学者研究又发现大蒜油还有良好的防癌抗癌作用[1~4],但作用机理尚不清楚,有待深入研究[5,6]。本文对大蒜油乳剂进行了抑瘤和对DNA聚合酶α活性影响的实验研究,结果报道如下。

  1 材料

  1.1 药物及配制 大蒜油(G)、红毛五加多糖(A),均由中国中医研究院基础理论研究所提供,4℃冰箱保存。大蒜油乳剂配制:G1g,吐温-802g,加蒸馏水至100mL。

  1.2 动物及癌株 实验选用昆明种♂小鼠,体重20~22g,购于中国医学科学院动物中心,合格证书:医动字第01-3001号,为二级动物。U14癌株由中国中医研究院中药所提供。

  1.3 主要试剂 3H-胸腺嘧啶核苷三磷酸(3H-TTP)放射比强度1.74TBq/mmol(25Ci/mmol),英国Amersham公司产品;脱氧核苷三磷酸dATP、dGTP、dCTP,二巯基苏糖醇(DTT),均为美国Sigma公司产品;小牛胸腺DNA,纯度98%,英国Serva公司产品;DNA聚合酶α标准品,500u/50μL,华美生物技术工程公司产品;2,5-(二苯基恶唑)苯,1,4-双-2(5-苯基恶唑)苯,均为进口分装,上海化学试剂采购供应站试剂厂;小牛白蛋白,中国科学院上海生化研究所生产。

  1.4 仪器 501型超级恒温水浴器,上海实验仪器厂产品;SCR20BA型高速冷冻离心机,日本日立公司产品。1217型LKB液体闪烁计数器,芬兰产品。玻璃组织匀浆器,国产。

  2 方法与结果

  2.1 对小鼠U14癌细胞增殖的影响

  小鼠一次ip接种1×107个细胞/只,于接种后第3天随机分成3组,即:对照组、大蒜油组(100mg/kg)、复方大蒜油组(G100mg/kg+A100mg/kg),并开始ip给药。对照组给等体积的生理盐水(0.2mL/只)。每天给药一次,连续3d。于ip给药第81h、105h、129h分别将动物放血处死,剪开腹腔以生理盐水冲洗,收集腹水约5mL左右,以1200r/min低温(5℃)离心洗涤二次,计癌细胞的体积;然后用冷生理盐水(5℃)定容至5mL。取20μL稀释进行癌细胞计数。结果表明:大蒜油组(G)和复方大蒜油组(G+A)腹水癌细胞增殖数明显低于生理盐水组。说明大蒜油有明显的抑制U14癌细胞增殖的作用。见表1。

  收稿日期:1999-06-04

表1 大蒜油对小鼠U14癌细胞增殖的影响

组 别 81h 105h 129h
癌细胞体积/mL 癌细胞数

  /(×108个)

癌细胞体积/mL 癌细胞数

  /(×108个)

癌细胞体积/mL 癌细胞数

  /(×108个)

对照组 0.80 2.1625 1.0 2.3450 3.2 19.960
大蒜油组 0.25 0.6950* 0.6 1.2400* 0.9 2.765*
复方大蒜油组 0.70 1.4475* 0.5 1.0275* 0.3 1.035*

  注:与对照组比较,*P<0.001。2.2 对小鼠U14癌细胞DNA聚合酶α活性的影响

  将上述洗涤二次的腹水癌细胞液离心,弃上清,收集癌细胞,加入DNA聚合酶匀浆液进行细胞匀浆,用高速冷冻离心机16000r/min低温(5℃)离心60min。取上清液测定DNA聚合酶α的活性[7]。测定方法:缓冲液(50mmolTris/HCl,pH7.5,8mmolMgCl2·6H2O,1mmolDTT),4μg活化小牛胸腺DNA(水浴煮沸7min),6μgdATP、6μgdGTP、6μgdCTP,1μCi 3H-TTP(95C.P.M/pmol),加癌细胞匀浆离心上清液10μL,测定系统总体积为100μL。实验同时设DNA聚合酶α标准管,置于37℃水浴保温60min。加入10%三氯乙酸1mL停止反应,分别将样品小心滴入49号玻璃纤维滤膜上抽滤,用10%三氯乙酸1mL洗涤二次,分别用70%及90%乙醇10mL各洗涤一次(脱水),置于烤箱中(70℃)烘干。将滤膜片移入装有5mL苯系统闪烁液(ppo7g+popop0.5g加二甲苯至1000mL)的闪烁杯内,用液体闪烁仪进行放射性测量。采用Lowry方法测定癌细胞匀浆液蛋白质含量[8],用小牛白蛋白作为蛋白质定量的标准。计算出100mg蛋白质中的酶活性,结果进行统计学处理(t检验)。

  实验结果表明:大蒜油组(G)和复方大蒜油组(G+A)DNA聚合酶α的活性明显低于生理盐水组。说明大蒜油有明显的抑制DNA聚合酶α活性的作用,从而达到抑制DNA合成的目的。见表2。

表2 大蒜油对小鼠U14癌细胞

  DNA聚合酶α活性的影响

组 别 DNA聚合酶α的活性(U/100mgProtein)
81h 105h 129h
空白对照组 213.23 501.03 270.50
大蒜油组 143.33* 264.57* 246.83*
复方大蒜油组 113.36* 127.84* 241.87*

  注:与对照组比较,*P<0.001。3 讨论

  国内学者研究[9]证明,大蒜油能提高小鼠生命率和有一定的抑瘤作用,并应用流式细胞术(FCM)分析了大蒜油作用机理。目前,一般认为癌细胞的生存和增殖主要靠DNA的合成,而DNA的合成需要三个条件,即底物、四种脱氧核苷酸、模板DNA,它们在聚合酶α作用下合成DNA,而抗肿瘤药物有抑制DNA合成的作用,其作用靶子有两种可能:一是作用于DNA聚合酶本身;二是作用于模板,与模板结合或相嵌[10]。本实验表明,大蒜油组(G)能明显抑制DNA聚合酶α的活性,从而提示这一机理参与抑制了小鼠腹腔U14细胞增殖。这也进一步说明了大蒜油对癌细胞作用的某些机理。

  参考文献:

  [1]潘希愚,李风琴,谢根法.生大蒜匀浆、二烯丙三硫和三种抗癌药对胃癌细胞株的剂量效应比较[J].中华肿瘤杂志,1985,7(2):103.

  [2]湖南医学院大蒜液抗癌研究协作组.大蒜提取液抗癌作用体外实验的初步报告[R].湖南医学院医学研究资料,1997.

  [3]Belman S.Ontion and garlic oils inhibittumer promotion[J].Carcinogensis, 1983,84:1063.

  [4]Wargovich MJ.Dially sulfide,a glavor component of garlic(AlliumSativum),inhibits dimethylhydrazine induced coloncancer[J].Carcinogensis,1987,8(3):487.

  [5]刘永久.大蒜的研究及其制剂的开发[J].医学情报,1988,10:28.

  [6]陶文洪.肿瘤防治中的大蒜研究[J].国外医学肿瘤分册,1986,3:146.

  [7]邱长春,吴冠芸,吴志奎.腹水癌细胞DNA聚合酶α的纯化及其性质的研究[J].中国医学科学院学报,1984,(4):12.

  [8]Lowry,O.H.Rosebrough,H.J.Farr.A,Land Randall.R.J.1951 protein measurement with the Folinphenol reagent[J].Biolchem,1983:265.

  [9]谢锦玉,高玉民,沈联慈,流式细胞术分析大蒜油对癌细胞DNA合成及细胞周期的影响[J].中西医结合杂志,1992,12(2):92.

  [10]陈双厚,吴志奎,刘凤云.“天仙丸”对DNA聚合酶α及DNA模板活性的影响[J].新疆中医药,1990,(1):43.

收稿日期:1998-07-20


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