乳腺癌细胞可溶性FasL分泌及其对淋巴细胞凋亡的诱导

肿瘤 2000年第4期第20卷 罗氏通讯

作者：苏逢锡　贾渭娟　陈积圣　宋尔卫

单位：苏逢锡　贾渭娟　陈积圣　宋尔卫（中山医科大学孙逸仙纪念医院乳腺外科 广州 510120）

关键词：乳腺肿瘤；可溶性Fas配基；细胞凋亡；免疫抑制

　　中图分类号：R737.9文献标识码：A文章编号：1000-7431(2000)04-0310-03

　　乳腺癌组织有较高的Fas配基(FasL)表达^［1］，这种表达是否可诱导机体Fas阳性的免疫效应细胞凋亡，从而主动抑制机体的免疫功能，目前尚不清楚。作者通过检测乳腺癌细胞株MCF-7 Fas mRNA和蛋白的表达，以及其对可溶性FasL(sFasL)的分泌，观察该细胞株对Fas表达阳性的J和T细胞凋亡的诱导作用，从而探讨乳腺癌抑制机体免疫功能的机制。

　　材料与方法

　　一、材料

　　效应细胞和靶细胞系　效应细胞为乳腺癌MCF-7细胞系，靶细胞为Jurkat白血病T淋巴细胞 ，由美国新泽西洲大学任国媚博士提供；均在含10 %小牛血清的PRMI 1640培养液中传代培养。

　　二、方法

　　1.膜型FasL(mFasL)和sFasL的Western免疫印迹法检测　分别提取乳腺癌MCF-7细胞培养上清液和经裂解后细胞溶解液的蛋白质，并分别取50 ug样品与等体积加样缓冲液混和，煮沸5 min，12 % SDS-PAGE电泳，然后电转移至NC膜上，用兔抗人抗FasL多克隆抗体(Santa公司)作Ⅰ抗体，HRP标记的羊抗兔IgG(Santa 公司)作Ⅱ抗体，ECL (Santa 公司)荧光显色。

　　2.FasL mRNA的RT-PCR检测　MCF-7细胞总RNA提取采用异硫氰酸胍、酚、氯仿抽提“一步法”。RT-PCR采用Promega公司反转录试剂盒，按要求操作。取逆转录产物20 μl加入30 μl PCR 体系(PCR试剂盒，华美公司)，引物浓度为200 ng/μl(mg/L)。反应条件及引物如下，FasL特异引物序列：5’-GGATTGGGCCTGGGGATGTTTCA-3’(上游)，5’-TTGTGGCTCAGGGGCAGGTTGTTG-3’(下游)。β-肌动蛋白(β-actin)特异引物序列：5’-GTGGGGCGCCCCAGGCACCA-3’(上游)；5’-CTCCTTAATGTCACGCACGATTTC-3’(下游)。按下述条件扩增：94 ℃，40 s；55 ℃，60 s；72 ℃，60 s。阳性对照采用表达FasL的人结肠癌细胞株SW620；阴性对照用不表达FasL的人结肠癌细胞株LoVo,均由美国新泽西洲大学任国媚博士提供。

　　3.混合细胞培养DNA片段化检测(JAM 试验)　按文献方法^［2］用3.7×10⁸ Bq/Ld(10mCi/Ld)［³H］TdR(Amersham)标记靶细胞Jurkat细胞核DNA，PBS洗2次。按5×10⁶/L把效应MCF-7乳腺癌细胞加入到平底96孔板中，根据不同的E/T(E：效应细胞；T：靶细胞)比率加入标记好的靶细胞。37 ℃ CO₂培养箱中培育5 h，收集细胞行放射性计数，推算靶细胞中片段化DNA百分含量，代表其凋亡的含量。计算公式为：片段化DNA(%)=100%×(不加入效应细胞的完整靶细胞核DNA放射计数-加入效应细胞的完整靶细胞核DNA放射计数)/不加入效应细胞的完整靶细胞核DNA放射计数。

　　4.效应细胞培养上清液对靶细胞凋亡的诱导　分别按0∶1、1∶2、1∶1和2∶1的比例在Jurkat细胞培养液中加入MCF-7细胞培养上清液，4 ℃下培育Jurkat细胞过夜。收集细胞，PBS洗后离心5 min，加入70 %乙醇，4 ℃下培育30 min，PBS洗后加入50 μl碘化丙碇(PI)染液50 mg/L PI,0.1 % Triton X-100,0.1 mmol/L EDTA(Na)₂，50 mg/L RNase A(50 U/mg)，室温下培育30 min，流式细胞仪检测DNA含量分布。每次计数10⁴个细胞。所有资料经LYSIS Ⅱ软件(Becton Dickinson)进行定量检测。

　　5.统计学分析　每项试验重复5孔，数值以平均值±标准差表示。均数组间比较采用t检验。

　　结果

　　1.mFasL和sFasL的 Western免疫印迹检测结果　乳腺癌MCF-7细胞溶解液经应用抗FasL抗体 Western免疫印迹法检测在40 kDa位置上显示清晰的蛋白带(图1，Lane A)，其细胞培养上清液经同样检测后在26 kDa位置上显示蛋白带(见图1，Lane B)，分别与文献报道的 mFasL和分泌型 sFasL蛋白带的位置相符^［3］。而阴性对照中则未见相应位置的蛋白带显示(见图1，Lane C)。

图1　乳腺癌MCF-7细胞裂解液和培养上清液的抗FasL多抗Western印迹检测。

　　(M:Size Marker;Lane A:MCF-7细胞裂解液，见mFasL阳性；Lane

　　B:MCF-7培养上清液，见sFasL阳性；Lane C:阴性对照)

　　2.FasL mRNA 的RT-PCR检测结果　分别采用已知FasL mRNA阳性和阴性的人结肠癌细胞株作为对照系统，RT-PCR法检测结果显示乳腺癌MCF-7细胞呈FasL mRNA表达阳性，为344 bp大小的DNA片段(图2)。

图2　乳腺癌MCF-7细胞FasL mRNA的RT-PCR检测结果。

　　(M:Size Marker；1：阳性对照；2：阴性对照；3：MCF-7细胞)

　　3.混合培养的靶细胞片段化的DNA含量　观察在不同效应细胞(MCF-7)与靶细胞(Jurkat)比例(E/T)时，Jurkat细胞片段化DNA含量的百分率变化。结果表明E/T=1时，DNA片段化含量为(9.6±1.2) %；E/T=2，为(19.0±3.8) %；E/T=4，为(30.2±7.4 %；E/T=8，为(57.3±9.8) %。因此，随着效靶细胞比例升高，靶细胞(Jurkat)片段化DNA含量也上升(P＜0.01)。

　　4.MCF-7细胞上清液对Jurkat细胞凋亡的诱导　不同浓度的MCF-7细胞培养上清液处理Jurkat细胞，通过PI对DNA染色并应用流式细胞仪检测细胞DNA含量分布，其中，DNA含量低于G₁期的亚二倍体细胞(sub-G₁细胞)出现是细胞凋亡的重要特征。结果显示，不加入MCF-7上清液时(0∶1)，Jurkat细胞AI为(1.2±0.4)%；上清液与PRMI 1640培养液比例为1∶2时，AI为(8.6±2.7)%；比例为1∶1时，AI为(19.4±2.5)%；2∶1时，AI为(34.7±4.6)%。可见，随着MCF-7上清液浓度的增加，Jurkat细胞中凋亡细胞的比例也增高(P＜0.01)。

　　讨论

　　Fas配基(FasL)是一种Ⅱ型跨膜蛋白，分子量为40 kD，属于肿瘤坏死因子超家族成员。FasL能与受体Fas蛋白(CD95)结合，导致表达该蛋白的细胞发生凋亡。由于机体免疫活性细胞如淋巴细胞、NK细胞等均表达Fas蛋白并对FasL介导的凋亡敏感，故肿瘤细胞表达FasL被认为是其抑制机体免疫功能的因素之一^［4］。体外和体内的研究均证明乳腺癌细胞可表达FasL^［1］，乳腺癌组织的免疫组化研究发现FasL阳性的乳腺癌旁浸润淋巴细胞发生较大量的凋亡，故认为Fas-FasL系统参与乳腺癌免疫逃避的机制^［5］。

　　白血病细胞的跨膜型FasL可被间质金属蛋白酶切割，其膜外段脱落形成sFasL，分子量为26kD，被释放至细胞周围环境中^［6］。但目前在实体肿瘤中有关sFasL分泌的研究尚少。作者采用抗FasL抗体Western免疫印迹法在MCF-7细胞培养上清液中检测出可溶性的FasL,由于在MCF-7细胞裂解液中可检测到跨膜型的FasL蛋白存在，RT-PCR也证实该细胞中含有过量表达的FasL mRNA，因此作者认为，细胞培养上清液中的sFasL来源于MCF-7细胞，是其跨膜型FasL蛋白的膜外段脱落产物。其它恶性肿瘤如前列腺癌细胞在体外培养时也分泌大量的sFasL^［7］。

　　作者发现MCF-7细胞与对FasL敏感的Jurkat细胞共同培养时，随着MCF-7细胞比例的增加，Jurkat细胞发生凋亡的数量也增加，说明MCF-7细胞可通过胞膜表面的FasL或分泌的sFasL作用于Jurkat细胞的Fas蛋白，诱导其凋亡的发生。进一步用含有sFasL的MCF-7培养上清液处理Jurkat细胞，随着其浓度增加，Jurkat细胞凋亡数量也增加，可见sFasL不仅能与Fas结合，也同样具备跨膜型FasL的生物学活性，诱导Fas阳性的淋巴细胞凋亡。Martinez等^［3］也证实激活的淋巴细胞分泌的可溶性FasL可诱导Jurkat细胞凋亡。因此作者认为乳腺癌细胞可能通过sFasL的分泌，诱导机体淋巴细胞凋亡，从而主动抑制机体的抗肿瘤免疫功能。

　　作者简介：苏逢锡，大学本科，副主任医师。

　　参考文献

　　［1］O’Connell J,Bennett MW,O'Sulivan GC,et al.Expression of Fas(CD95/APO-1)ligand by human breast cancers:significance for tumor immune privilege〔J〕.Clin Diagn Lab Immunol,1999,6:457

　　［2］Matzinger P.The JAM test:a simple assay for DNA fragmentation and cell death〔J〕.J Immunol Methods,1991,145:185

　　［3］Martinez-Lorenzo MJ,Alava MA,Anel A,et al.Release of preformed Fas ligand in soluble form is the major factor for activation-induced death of Jurkat T cells〔J〕.Immunology,1996,89:511～517

　　［4］Bennett MW,O'Connell J,O'Sullivan GC,et al.Expression of fas ligand by human gastric adenocarcinomas:a potential mechanism of immune escape in stomach cancer〔J〕.Gut,1999,44:156

　　［5］Gutierrez LS,Eliza M,Niven-Fairchild T,et al.The Fas/Fas-ligand system:a mechanism for immune evasion in human breast carcinomas〔J〕.Breast Cancer Res Treat,1999,54:245

　　［6］Tanaka M,Suda T,Haze K,et al.Fas ligand in human serum〔J〕.Nat Med,1996,2:317

　　［7］Liu QY,Rubin MA,Omene C,et al.Fas ligand is constitutively secreted by prostate cancer cells in vitro〔J〕.Clin Cancer Res,1998,4:1803

(收稿日期：2000-03-06)