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甲3(H3N2)亚型流感病毒相变异分子生物学基础的研究

甲3(H3N2)亚型流感病毒相变异分子生物学基础的研究

中华实验和临床病毒学杂志 1998年第1期第0卷 论著

作者:郭元吉 董婕 王敏 张烨 郭俊峰

单位:100052 北京 中国预防医学科学院病毒学研究所

  关键词: 流感病毒;核苷酸序列;△相变

  【摘要】 目的 弄清甲3(H3N2)亚型流感病毒相变异的分子生物学基础。方法 病毒粒RNA经逆转录合成cDNA,经聚合酶链反应(PCR)扩增,产物纯化,采用双脱氧链末端终止法进行核苷酸序列测定。结果 35株甲3(H3N2)亚型流感病毒的HA1区基因长度均为984个核苷酸,它们间无发生任何核苷酸丢失或插入并发现HA1蛋白分子上氨基酸序列多变点主要在HA蛋白的顶部,尤其抗原决定簇B区和受体结合部位(RBS),这进一步证实了,HA蛋白分子上氨基酸替换主要是群免疫压力所造成。同时还发现了半胱氨酸和脯氨酸具有高保守性及糖基化位点主要集中在HA1区的N和C端,尤其N端。糖基化位点如此分布在病毒基因进化和流行病学上意义至今不清楚。结论 H3N2亚型病毒“O”相毒株的出现与其蛋白分子上第226位氨基酸发生替换密切相关并推测“O”相毒株HA蛋白三维结构与“D”相的不同。

Studies on the basis of molecular biology of the phase change of influenza A(H3N2) viruses

Guo Yuanji, Dong Jie, Wang Min, et al. Institute of Virology, Chinese Academy of Preventive Medicine, Beijing 100052

  Abstract The analysis of nucleotide sequences on HA1 domain of 35 strains of influenza A(H3N2) virus showed that their HA1 genes all were 984 nucleotides in length coding for a HA1 protein with 328 amino acides and there was not any occurrence of insertion or deletion of nucleotides on HA1 genes among them. The appearance of “O” phase strain of influenza A(H3N2) virus was closely related with substitution at 226 position of amino acid on HA1 protein molecule and the three-dimensional structural change of HA protein. The results in this paper indicaded that the positions with multiple changes on HA1 protein molecule located at the top of HA protein, especially at antigenic determinant B site or receptor binding site. These further demonstrated that the substitution of amino acid on HA1 protein molecule was casued mainly by suppress of herd immunity. This study also showed that the position of the cysteine and proline residues on the HA1 protein molecule were conservative and that the glycosylation sites located at N and C terminals, especially at N terminal of the HA1 protein The significance of such a distrib△ of glycosylation sites in the evolution of viral genes and epidemiology still remain unknown.

  Key words: Influenza A(H3N2) virus  Ution Phase change

  相变是甲型流感病毒变异的一种形式〔1〕,但一般认为甲2(H2N2)和甲3(H3N2)亚型毒株不具有“O”相特性,它们可直接通过鸡胚尿囊腔分离出并能凝集鸡红细胞。1996年初,我们在流感监测中发现了具有“O”相特性的甲3(H3N2)亚型流感病毒株〔2〕。由于这属首次发现,故有必要弄清其出现的分子生物学基础。

  甲型流感病毒基因组含8个节段,至少编码10种蛋白,但它们是依靠其毒粒表面血凝素,(HA)蛋白抗原来识别和结合红细胞表面含唾液酸的糖蛋白或糖脂的受体。导致了红细胞的凝集。Weis等〔3〕采用x-射线分析法弄清了HA蛋白结合唾液酸区的结构。Nobusawa等〔4〕观察到了HA蛋白受体结合部个别氨基酸替换就能直接影响HA蛋白对红细胞结合的能力。故我们测定了1979年以来H3N2亚型毒株HA1区基因的核苷酸序列并分析和比较其产物的氨基酸序列,以便弄清H3N2病毒“O”相毒株出现的分子生物学基础。

  1 材料和方法

  1.1 甲3(H3N2)亚型毒株的来源 见表1。除A/Bangkok/1/79(H3N2)由WHO提供外,其余均来自国家流感中心。

  1.2 病毒增殖 “D”相毒株按常规法接种9-11日龄鸡胚尿囊腔进行增殖,收尿囊液,细菌培养阴性,鸡红细胞凝集滴度≥40者;“O”相毒株,按常规接种MDCK细胞,收其细胞维持液,细菌培养阴性,对豚鼠红细胞凝集滴度≥40者。

  1.3 “O”、“D”相转变 将具有“O”相特性的A/京科/32/96(H3N2)和A/京科/18/96(H3N2)两毒株经鸡胚尿囊腔适应传代,当所收获的尿囊液对胚鼠和鸡红细胞凝集能力相同时,再经鸡胚尿囊腔传两代即为已从“O”相转变成“D”相。

  1.4 病毒浓缩和纯化 1992年及之前分离的病毒在提取RNA之前,均按常规在鸡胚增殖后,所收获的新鲜尿囊液,经超速离心进行浓缩,用30%~60%的蔗糖梯度离心进行纯化。

  1.5 病毒粒RNA提取 1992年及之前所分离毒株提取法见参考文献[5]。1992年之后所分离毒株RNA提取,采用德国1995年出品的RNeasy RNA Kit,方法按QIAquickTM Handbook所提供的。

  1.6 引物 用于cDNA合成和PCR扩增的有:F7(5’d-ACTATCATTGCTTTG)和R1073

  (5'd-CCTGCGATTGCGCCGAAT);用于序列测定的有:25(5’d-TACATTTTCTGTCAG),

  145(5'd-GGTAGAATATGCGACAGT),282(5'd-CAGCAACTGTTACCC),490

  (5'd-CTGAACGTGACTATG);721(5'd-GACATACTGTTGATT),814

  (5'd-GACCCCATTGGCACCTGC),R362(5'd-TAAGGGTAACAGTTGCTG)和F7。35S-ATP,

  逆转录酶,PCR试剂盒,PCR产物纯化试剂盒以及Sequence system试剂盒均由美国CDC提供。

表1 本研究所用的甲3(H3N2)亚型流感病毒株

  Tab.1 Influenza A(H3N2) viruses examined in the current study

病毒

  Viruses

简称

  Abbreviation

  Phase

A/Bangkok/1/79 Bang 79-1 D
A/Yaan/2/87 YA 87-2 D
A/Shanghai/11/87 SH 87-11 D
A/Beijing/57/89 BJ 89-57 D
A/Shanghai/1/89 SH89-1 D
A/Sichuan/18/89 SC 89-18 D
A/Guangdong/16/89 GD 89-16 D
A/Guangdong/44/89 GD 89-44 D
A/Jinan/15/90 JN 90-15 D
A/Wuhan/7/90 WH 90-7 D
A/Shanghai/24/90 SH 90-24 D
A/Beijing/32/92 BJ 92-32 D
A/Beijing/46/92 BJ 92-46 D
A/Beijing/47/92 BJ 92-47 D
A/Beijing/361/92 BJ 92-361 D
A/Sichuan/3/92 SC 92-3 D
A/Sichuan/10/92 SC 92-10 D
A/Guangdong/1/92 GD 92-1 D
A/Shandong/9/93 SD 93-9 D
A/Guangdong/25/93 GD 93-25 D
A/Johannesbury/33/94 Joh 94-33 D
A/Guangxi/13/94 GX 94-13 D
A/Guangdong/274/94 GD 94-274 D
A/Beijing262/415/94 BJ 94-415 D
A/Wuhan/359/95 WH 95-359 D
A/Shenzhen/203/95 SZ 95-203 D
A/Shanghai/9/95 SH 95-9 D
A/Shanxi/28/95 SX 95-28 D
A/Fujian/57/96 FJ 96-57 D
A/CNIC/3/96 CNIC 96-3 O
A/CNIC/10/96 CNIC 96-10 O
A/CNIC/32/96 CNIC 96-32 D
A/CNIC/32/96′ CNIC 96-32′ O
A/CNIC/18/96 CNIC 96-18 D
A/CNIC/18/96′ CNIC 96-18′ O

  1.7 cDNA合成和聚合酶链反应 见文献[6]

  1.8 PCR产物纯化 按德国出品的,QIAguick PCR Purification Kit所提供的方法。

  1.9 核苷酸序列测定 采用双脱氧链终止法〔7〕,基本步骤参考USB公司DNA sequence试剂盒。2 结果

  35株测定病毒,其HA1区基因长度均为984个核苷酸,它们彼此间无发生任何核苷酸插入或丢失。现将所测定的核苷酸序列所推导出的相应氨基酸序列列于图1。

图1 35株甲3(H3N2)亚型流感病毒HA1区氨基酸序列虚线示氨基酸序列同WH95-359;黑线示糖基化位点

  fig. 1 Deduced amino acid sequence of the HA1 gene of influenza A(H3N2) virusesThe dot line in dicates the amino acid sequence is identical with that of WH95-359 virus. The black line means the glycosylation site

  图1结果表明,所有测定毒株HA1区蛋白分子均含328个氨基酸,它们之间共有52个位点发生了替换,保守位点与变异点之间比例为328∶52=5.3∶1。发生两次或两次以上替换的位点共有9个:124(抗原决定簇A区),133(RBS前壁),156(抗原决定簇B区),186(紧挨RBS),189(抗原决定簇B区),193(紧靠RBS后壁),197(抗原决定簇B区),226(RBS左侧壁),262(靠近抗原决定簇E区)。上述位点除124和262外,其余7个均位于HA蛋白三维结构顶部。清楚表明了HA1区蛋白分子上氨基酸的替换主要是由于群免疫压力所造成。

  从图1还可看出,所有半胱氨酸(C)位点均未发生替换,表明它们相互间双硫键是相同的,同时所有脯氨酸(P)位点也均相同。此外,糖基化位点,除了BJ96-32和BJ96-32′于122位插入一个及BJ96-32′和BJ96-18′在246位丢失一个糖基化点外,测定的其余毒株均有共同8个糖基化位点,它们位于8,22,38,63,126,165,246和285。糖基化位点主要分布在HA1蛋白分子的两头,尤其集中在N端。

  从图1结果很有意义地发现了第226位氨基酸,自1995年以来所分离出的毒株均为“Ⅰ”(异亮氨酸),而1995年以前的毒株不是“L”(亮氨酸)就是“Q”(谷氨酰胺)。然而,在1995年所分离的“O”,“D”相毒株间见不到第226位氨基酸有差异。

  通过实验室诱导两组病毒间,仅在其246位点上,“O”相毒株为“N”(天冬酰胺)而“D”相毒株为D(天冬氨酸),造成一个糖基化位点的丢失。除此之外,见不到实验诱导的“O”与“D”相毒株间有其它规律性的差异。

  3 讨论

  本研究表明,H3N2亚型流感病毒相特性的出现与其蛋白分子上第226位氨基酸替换有密切相关。因它是RBS袋的左侧壁重要成员。一般认为它的改变就能引起病毒粒HA蛋白与受体结合的特异性。同时根据国外过去所报道的资料〔9,10〕,无论是,马还是禽的H3亚型毒株,其HA1蛋白分子上第226位氨基酸不是“L”就是“Q”,从未出现过“I”。但1995年以来,无论“O”相还是“D”相毒株其HA1蛋白分子上第226位均为“I”,故看来,仅第226位氨基酸改变能引起病毒粒对受体特异性的改变,但还不够完全导致H3N2亚型毒株相的改变,故推测在“O”与“D”相毒株间其HA蛋白三维结构方面存在着差异。

  虽然通过实验诱导的“O”、“D”毒株间在第246位上氨基酸有差异,但在其它“O”、“D”相毒株间见不到有相同的差异,同时第246位是位于HA蛋白抗原决定簇的D区,离RBS甚远,故与病毒粒相变关系不密切。“C”与“P”残基具有保守性,这与国外报道〔11,12〕是一致的。一般认为它们在维持HA蛋白三维结构中起着重要的作用〔13〕。为何糖基化位点主要集中在HA1蛋白的N和C端,尤其N端,这种分布在病毒基因进化中作用及在流行病学上意义至今不清楚。估计H3N2亚型病毒“O”相毒株于1995年就已出现,由于当时没预计到,许多未分离出,分离到的也已经鸡胚传多代,已变成“D”相毒株。

  本文受国家自然科学基金资助(39670037)

  1997年10月24日收稿 1998年1月20日修回

  参 考 文 献

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  3 Wei W, Brown J H, Cusack, et al. Structure of the influenza virus haemagglutinin complex with its receptor. Nature, 1988, 333: 426-431.

  4 Nobusawa E, Nakajima. Amino acid substitution at 226 of the hemagglutinin molecule of influenza A(H1N1) affects receptor binding activity but not fusion activity. Virology, 1988, 167: 8-13.

  5 Guo Y J, Desselberger D. Genome analysis of influenza C viruses isolated in 1981/1982 from pigs in China. J Gen Virol, 1984, 65: 1873-1880.

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  7 Cox N J, Kitame F, Klimov A, et al. Comparative studies of wild type and cold mutant (temperature-sensitive) influenza viruses: detection of mutation in all genes of the A/Ann Arbor/6/60(H2N2) mutant vaccine donor strain. Microbiol Pathogenesis, 1986, 1: 387-392.

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  10 Bean W J, Schell M, Katz J, et al. Evolution of the H3 influenza virus hemagglutinin from human and nonhuman hosts. J Virol, 1992, 66(2): 1129-1138.

  11 Both G W, Sleigh M J. Complete nucleotide sequence of the hemagglutinin gene from a human influenza virus of the Hong Kong subtype. Nucleic Acids Res, 1980, 8: 2561-2565.

  12 Gething M J, Bye J, Skehel J, et al. Cloning and DNA sequence of double stranded copies of hemagglutinin genes from H2 and H3 strains elucidates antigenic shift and drift in human influenza virus. Nature (London), 1980, 287: 301-302.

  13 Wilson J A, Skehel J J, Wiley. Structure of the haemagglutinin membrane glycoprotein of influenza virus at 3 A resolution. Nature (London), 1981, 289: 366-367.


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