大肠癌及腺瘤中细胞凋亡和bcl-2Bax基因的表达
中华病理学杂志 1998年第2期第0卷
作者:徐晓丽 殷智榕 黄孝立 张云汉
单位:450052 郑州,河南医科大学病理学教研室
细胞凋亡(apoptosis)是受基因调控的细胞死亡方式,在生理条件下,它与细胞有丝分裂相辅相成,维持组织中细胞数目及状态的衡定。细胞凋亡及其调控基因的异常,导致细胞生死平衡紊乱,可能与肿瘤的发生、发展有着重要的关系。
一、材料和方法
1.标本:40例大肠癌(高分化25例,中分化5例,低分化10例),19例大肠腺瘤(管状腺瘤4例,管状绒毛状腺瘤11例,绒毛状腺瘤4例),以及10例正常人大肠粘膜的常规石蜡包埋组织均取自本室1995~1996年外检蜡块,每例标本作4μm连续切片,HE染色确诊,并筛选典型组织块。
2.bcl-2和Bax免疫组织化学染色:应用bcl-2单抗,Bax多抗(Santa cruz公司产品),微波抗原修复,免疫组织化学SP法染色,DAB显色。光镜下从染色强度和阳性细胞比例两方面评价染色结果并计分。
3.凋亡细胞的TUNEL法检测:采用华美公司凋亡检测试剂盒对随机抽取的18例大肠癌,6例正常粘膜,6例腺瘤,选择无坏死区进行检测,设阳性和阴性对照。阳性细胞核着棕黄色(DAB显色)。计数油镜(放大1000倍)视野下平均1000个细胞中的阳性细胞数,以百分比表示作为细胞凋亡率。
二、结果
1.bcl-2免疫组织化学染色:正常大肠粘膜bcl-2表达局限于腺窝底部。78.9%腺瘤表达阳性,阳性反应多呈灶性。75%癌表达阳性,多呈弥漫着色。高分化癌bcl-2阳性率(88%)显著高于低分化癌(50%),P<0.05。
2.Bax免疫组织化学染色:所有被检组织均有Bax阳性表达,除正常粘膜表达程度较为一致外,肿瘤组织中Bax表达程度有所差异,但无统计学意义。
3.TUNEL检测结果:TUNEL阳性细胞核呈棕黄色,固缩成团或聚成环状,或碎裂,形成凋亡小体(图1、2)。正常粘膜仅在表面有少数阳性细胞。腺瘤组织中散在阳性细胞,凋亡率较正常组织明显升高,癌组织阳性细胞弥漫分布,可成小簇状,凋亡率较腺瘤增加一倍。高分化癌的细胞凋亡率(1.63%)显著高于低分化癌(0.58%),P<0.05。
4.bcl-2、Bax表达与细胞凋亡率的关系:bcl-2表达与凋亡率显著负相关(癌γ=-0.579,P<0.05;腺瘤γ=-0.739,P<0.01)。低bcl-2/Bax的组织中凋亡率(1.59%)显著高于bcl-2/Bax较高的组织(0.45%),P<0.05。
三、讨论
正常大肠粘膜腺窝底部抑凋亡基因bcl-2表达,无细胞凋亡,表层上皮促凋亡基因Bax表达,存在细胞凋亡,符合大肠粘膜上皮细胞移行成熟的生理特征。表明正常组织中凋亡的抑制和促进因素相互协调。大肠腺瘤细胞凋亡率升高,bcl-2灶性过度表达,大肠癌细胞凋亡率更高,bcl-2表达亦增强,提示在大肠癌发生早期即出现bcl-2表达及细胞凋亡异常,同时细胞凋亡可能随着癌发生过程中细胞增殖的旺盛而增多[1]。bcl-2表达与凋亡率显著负相关,此表达不断增强提示凋亡受抑制可能是大肠癌发生的一个重要机制。Bax表达本身似乎不显示与大肠癌的临床病理特征、细胞凋亡率等有关,但Bax与bcl-2二者结合起
图1 大肠癌组织中凋亡细胞弥漫散在 TUNEL×200 图2 TUNEL阳性细胞呈胞浆固缩,与邻周细胞脱离、核染色质浓缩及凋亡小体形成等典型凋亡形态(↑) TUNEL×1000 来分析显示,bcl-2与Bax表达程度的比值,与细胞凋亡率显著相关,bcl-2/Bax低的肿瘤组织其凋亡率明显高于bcl-2/Bax高的组织,Bax显示一种促凋亡作用,对抗bcl-2的抑凋亡作用,二者共同决定细胞是否走向凋亡[2]。高分化癌的较高凋亡率可能与其生长相对缓慢,侵袭较晚有关[3]。
总之,通过我们的研究显示,细胞凋亡和bcl-2基因表达在大肠癌发生发展过程中存在异常,Bax表达对bcl-2的抑凋亡功能有调节作用。细胞凋亡率尽管在大肠肿瘤中有所升高,但同时存在的bcl-2强表达提示凋亡过程仍然是受到了一定程度的抑制,可能由于这种抑制使细胞凋亡发生相对的不足,从而使突变细胞累积,发展为癌。
参考文献
1 King eD, Matteson J, Jacobs SC, et al. Incidence of apoptosis, cell proliferation and bcl-2 expression in transitional cell carcinoma of the bladder: association with tumor progression. J Urol, 1996, 155:316-320.
2 Yin xM, Oltval ZN, Korsmeyer SJ. BH1 and BH2 domains of bcl-2 are required for inhibition of apoptosis and heterodimerization with Bax. Nature, 1994,369:321-323.
3 Kasagi n, Gomyo Y, Shirai H, et al. Apoptotic cell death in human gastric carcinoma: analysis by terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP-biotin nick end labeling. Jpn J Cancer, 1994,85:939-945.
(收稿:1997-02-17 修回:1997-10-31)