GST-π类同工酶基因在卵巢癌组织中的表达及其与癌变的关系
中国肿瘤临床1999年第26卷第11期
王宏 李春海 陈高明 孙丽亚 卞丽红 杨毅 毛慧生
摘 要目的:检测GST-π基因在卵巢癌组织中的表达,探讨GST-π与卵巢癌癌变的关系。方法:采用免疫组化和RT-PCR方法,检测正常卵巢及卵巢良、恶性肿瘤组织中GST-πmRNA及蛋白水平的变化。结果:GST-π在卵巢组织中的表达与肿瘤的进展密切相关,即正常组织中GST-π几乎不表达,良性肿瘤中水平略有升高,交界性肿瘤多为低、中度表达,但阳性率明显升高,接近卵巢癌组织的水平。癌变组织则为中、高度表达且随临床分期的发展而逐渐增高。免疫组化与RT-PCR的结果符合率较高,但以RT-PCR法较为灵敏。结论:GST-π是与卵巢癌发生、发展密切相关的标志酶,它的表达异常与卵巢癌的预后有关。
关键词:GST-π 卵巢癌 免疫组化 RT-PCR
谷胱苷肽转移酶(glutathioneS-transferases,GSTs)主要包括α、μ、π等三类同工酶,参与机体的解毒功能。它们广泛分布于机体的各组织器官,但各亚类的分布具有器官特异性[1]。其中,π类同工酶与人类肿瘤关系最密切。自从Sato等[2]从大鼠化学致癌实验中推测GST-Pi是检测癌变“启动细胞”最早最灵敏的标志酶以来,与其相应的人GST-π与肿瘤的关系逐渐引起人们的重视,进而成为肿瘤学研究的热点之一。本文以卵巢癌手术切除组织标本为研究对象,采用RT-PCR和免疫组化方法,探讨GST-π基因在卵巢癌组织中的表达及其与卵巢癌发生发展的关系。
1 材料与方法
1.1 标本来源
收集解放军总医院和解放军307医院的卵巢组织标本和石蜡切片139例,其中卵巢癌62例,交界性肿瘤7例,上皮来源良性肿瘤40例,正常卵巢30例,以上诊断均经病理科医生核实。
1.2 GST-π酶蛋白在卵巢癌组织中的表达
1.2.1 主要试剂和材料鼠抗人GST-π抗体由本室制备,ABC免疫组化试剂盒为美国Vector公司产品,购自北京中山生物工程公司。
1.2.2 方法采用标准ABC法[3,4]。
1.2.3 结果判定ABC法中阳性反应产物为棕黄色,分布于胞膜和胞浆,依据阳性细胞数目和显色程度分为-、±、+、++、+++。具体评分按Shimizu方法,在高倍镜下对细胞着色进行观察。着色范围:无着色为0,着色小于1/3为1,着色大于1/3为2,弥漫着色为3。将以上两项相加为最后结果,0为(-),1为(±),2为(+),3为(++),4为(+++)。
1.3 GST-π基因在卵巢癌组织中的表达
1.3.1 组织总RNA的提取采用异硫氰酸胍-酚-氯仿一步法提取总RNA[4],溶于适量DEPC处理的灭菌纯水中,RNA的定量与鉴定采用吸光度检测和甲醛变性琼脂糖凝胶电泳。
1.3.2 引物设计按照引物设计原则[5]设计引物并将引物设计在不同外显子上。GST-π引物取自cDNA序列5′863~882bp,3′1192~1213bp,扩增片段350bp[6]。β-actin基因引物取自cDNA序列5′346~367bp,3′558~580bp,扩增片段234bp[7]。
1.3.3 反转录合成cDNA第一链取卵巢组织总RNA1μg,以oligo(dT)为引物,反应体系10μl,65℃作用10min后加入反转录酶MMLV200U,37℃作用60min,95℃作用5min,产物于-20℃保存。
1.3.4 PCR扩增10μl反应体系含10×PCR缓冲液1μl,反转录产物1μl,30pmol/L的GST-π及β-actin引物各1μl,TaqDNA聚合酶0.5U。阳性对照采用经测序鉴定的质粒,阴性对照以未经反转录的RNA代替cDNA模板,空白对照管未加TaqDNA聚合酶。反应在PE2400DNAThermalCycler上进行,条件如下:94℃变性30s,55℃退火1min,72℃延伸2min,共35个循环后72℃作用7min,反应产物保存于4℃。
1.3.5 PCR产物定量分析取扩增产物5μl进行2%琼脂糖凝胶电泳,溴化乙锭染色,KodakDigitalScience凝胶成像系统照相,1D软件定量分析各条带的含量。GST-π片段/β-actin片段的比值为基因表达的相对量,比值小于0.1为低度表达(+),比值介于0.1至0.4之间为中度表达(++),比值大于0.4为高度表达(+++),目的基因无扩增条带为阴性。
2 结果
2.1 GST-π酶蛋白在卵巢肿瘤组织中的表达
正常卵巢组织中不表达GST-π;良性肿瘤阳性率为2.5%,阳性着色颗粒分布于胞浆和胞膜,Shimizu评分为3~4;交界性肿瘤阳性率明显高于良性者,为71%;卵巢癌GST-π酶蛋白颗粒亦分布于胞浆与胞膜,且多为+++或以上,阳性率高达75.8%,结合临床分期发现该酶蛋白的表达量与临床分期有关(P<0.01),提示预后不良(见图1、2,表1)。
图1 GST-π在卵巢癌组织中的表达ABC 10×20
图2 卵巢癌组织内GST-π的表达主要分布于胞浆及胞膜 ABC 10×40
表1 GST-π酶蛋白在卵巢组织中的表达
分类 |
GST-π |
例数 |
阳性率(%) |
+ |
- |
正常卵巢 |
0 |
30 |
30 |
0 |
良性肿瘤 |
1 |
39 |
40 |
2.5 |
交界性肿瘤 |
5 |
2 |
7 |
71 |
卵巢癌 |
47 |
15 |
62 |
75.8 |
Ⅰ期 |
5 |
7 |
12 |
42 |
Ⅱ期 |
6 |
4 |
10 |
60 |
Ⅲ期 |
21 |
2 |
23 |
91 |
Ⅳ期 |
15 |
2 |
17 |
89 |
2.2 GST-π基因在卵巢肿瘤组织中的表达
PCR扩增产物经琼脂糖凝胶电泳分离后表现为,GST-π为350bp条带,内参基因β-actin为234bp条带。RT-PCR定量检测GST-π基因在卵巢组织中的表达结果见表2,经统计学分析,正常卵巢与良性肿瘤组织间该基因表达无明显差异,但在卵巢癌组表达显著升高(P<0.05)。
表2 GST-π基因在卵巢组织中的表达
分类 |
例数 |
GST-π表达 |
阳性率
(%) |
低度 |
中度 |
高度 |
正常卵巢 |
30 |
0 |
0 |
0 |
0 |
良性肿瘤 |
40 |
1 |
1 |
0 |
5 |
交界性肿瘤 |
7 |
0 |
4 |
1 |
71 |
卵巢癌 |
62 |
5 |
17 |
31 |
85.5 |
合计 |
139 |
6 |
22 |
32 |
43.2 |
2.3 免疫组化及RT-PCR检测GST-π基因表达的比较
139例标本经免疫组化和RT-PCR检测GST-π基因的表达,统计学分析表明,两种方法有较高的一致性,尤其对于癌组织中GST-π基因表达的检测RT-PCR方法所得阳性率高于免疫组化值。RT-PCR方法与免疫组织化学法相比,具有特异性较强、快速、简便等优点。
3 讨论
肿瘤的发生是由于基因表达异常,引起蛋白质质和量的变化导致细胞生长、分化、死亡等生物学行为异常所致。GSTs作为一种重要的抗突变、抗肿瘤酶系在肿瘤的发生发展过程中发挥着重要作用。在卵巢肿瘤组织中GSTs的表达以GST-π为主,且从本文的实验结果来看,在良性病变发展到癌的过程中,GST-π的表达率逐渐增高,免疫组化的结果还发现GST-π的表达与临床分期有关(P<0.05),分期越高阳性表达越多,而临床分期越高预后越不好,因此提示GST-π的高表达与卵巢癌预后不良有关。
从理论上讲,理想的肿瘤标志物应具有100%的敏感性和100%的特异性,可到目前为止还没有一个肿瘤标志物能满足上述标准,GST-π的敏感性在卵巢癌组织中达到70%以上,达到了目前应用于临床肿瘤辅助诊断指标的一些肿瘤标志物的水平,但特异性较差,尚不能作为一个诊断性肿瘤标志酶。从方法上看,RT-PCR技术与免疫组化相比要简单、快捷且特异性强,尤其是通过对PCR产物的定量分析,更能客观地评价其表达程度和生物学意义。
GST-π酶蛋白在组织中的表达增高一般不外乎两种情况,一是蛋白合成量增加,二是由于蛋白质构象或结构变化导致半衰期延长。任何有功能的蛋白质都遵循这样的法则。而从蛋白质合成途径上看,一个有功能蛋白的合成一般要经历由基因到基因转录、转录后修饰、翻译、翻译后修饰等过程。因此蛋白质的合成受多种因素多个水平的调节和控制,其中任何一个基本环节出现障碍,都将导致蛋白质的表达异常和功能变化。目前通过对人肿瘤细胞的研究初步认为,GSTs同工酶蛋白表达升高主要是由于基因mRNA转录水平增高所引起[8,9],也可能存在转录后及翻译后修饰机制[10,11]。
*本文课题受国家自然科学基金资助 (编号 39570733)
作者单位:王宏 李春海 陈高明 孙丽亚 卞丽红 军事医学科学院基础研究所肿瘤分子生物学实验室 北京市100850
杨毅 毛慧生 天津市肿瘤医院分子生物学实验室
参考文献
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7 Sadayo NI, Hiroshi H, Premkumar R,et al. Molecular structure of the human cytoplasmic β - actin gene:interspecies homology of sequence in the introns. Proc Natl Acad Sci USA,1985;83:6133~44
8 齐春会,李春海.胎盘型谷胱甘肽S-转移酶基因在胃癌中的表达.生物化学与生物物理进展,1994;21(5):463~6
9 周江,齐春会,李春海,等.GSTs同工酶基因在乳腺癌中的扩增与基因表达.生物化学杂志,1995;11(5):551~6
10 Kuznich S,Vanderveer LA,Tew KD. Evidence for a glycoconjugate form of glutathione s-transferase pi. Int J Peptide Protein Res,1991;37:565~71
11 Morrow CS,Chiu J,Cowan KH. Postranscriptional control of glutathione s- transferase π gene expression in human breast cancer cells. J Biol Chem,1992;267:10544~50