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哮喘宁煎剂对哮喘豚鼠模型气道嗜酸细胞浸润的影响

哮喘宁煎剂对哮喘豚鼠模型气道嗜酸细胞浸润的影响

中华结核和呼吸感染 1999年第8期第22卷 论著摘要

作者:崔红生 黄启福 武维屏 李伯光 严京

单位:100700 北京中医药大学东直门医院呼吸科(崔红生、武维屏);北京中医药大学基础医学院病理室(黄启福、李伯光、严京)

  支气管哮喘是一种气道慢性非特异性炎症性疾病,目前西药治疗首选糖皮质激素,此类药物长期口服,毒副反应明显且易复发。中医药重视整体调节,治疗本病有潜在优势,我们运用根据武维屏教授临床验方研制的中药复方制剂“哮喘宁”煎剂治疗支气管哮喘10余年,疗效可靠。

  为进一步探讨和阐释支气管哮喘气道炎症的病理学特征以及“哮喘宁”煎剂抗气道炎症的疗效机制,我们复制豚鼠哮喘模型,观察致敏原激发后不同时间气道壁内嗜酸细胞(EOS)的浸润程度以及“哮喘宁”煎剂对其的影响。

  材料与方法 (1)实验动物:正常雄性豚鼠120只,体重(300±20)g,由北京市实验动物中心提供。(2)药物:氨茶碱片剂,每片0.1 g,天津市力生制药厂生产,用0.9%生理盐水溶解;“哮喘宁”煎剂(由柴胡、葶苈子、黄芩、瓜篓、丹参等药物组成),本院制剂室提供,每毫升含生药3.3 g。(3)实验方法:随机分为正常对照组、病理模型组、氨茶碱组及哮喘宁组,每组豚鼠各30只。病理模型组、氨茶碱组及哮喘宁组用10%卵清蛋白1 ml腹腔注射,2周后以1%的卵清蛋白雾化吸入直至出现咳嗽、喘鸣、呼吸道梗阻等哮喘症状。正常对照组给予相同剂量的生理盐水。氨茶碱组和哮喘宁组于激发前1小时分别给予氨茶碱50 mg/kg和哮喘宁煎剂22 g/kg灌胃;正常对照组和病理模型组分别给予蒸馏水每只2 ml灌胃。致敏豚鼠分别于激发后4、12、24小时用10%水合氯醛400 mg/kg腹腔注射麻醉,分别于腹主动脉和下腔静脉处取血。然后经右心室插管先以0.9 % 生理盐水100 ml快速灌洗,继以含4%多聚甲醛的0.1 mol/L、磷酸盐缓冲液(PB) 300 ml(pH 7.4)缓缓灌注,固定40分钟,取出肺脏,置同一固定液后固定24小时,常规石蜡包埋,切片,苏木素伊红(HE)染色,光镜观察。(4)观察项目:①外周血EOS计数;②动脉血氧分压(PaO2)、二氧化碳分压(PaCO2);③支气管肺组织炎症细胞浸润程度以及支气管壁内EOS计数变化。

表1 致敏原激发后不同时间外周血EOS计数变化(±s)

组别 只数 EOS计数(×109/L)
4小时 12小时 24小时
正常对照组 8

0.024±0.010

0.024±0.010

0.025±0.011

病理模型组 8 0.086±0.023 0.190±0.039*● 0.260±0.048*●☆
氨茶碱组 8 0.066±0.011*△ 0.120±0.032*▲● 0.260±0.048*●★
哮喘宁组 8 0.082±0.012*# 0.120±0.031*▲○ 0.220±0.032*●★

  注:与正常对照组比较*P<0.01;与病理组比较P<0.05,P<0.01;与氨茶碱组比较P<0.05;与4小时比较P<0.05,P<0.01;与12小时比较P<0.05,P<0.01;其余P均>0.05

表2 致敏原激发后不同时间PaO2的变化比较(±s)

组别 只数 PaO2(mm Hg)
4小时 12小时 24小时
正常对照组 8

95± 7

94± 8

97± 7

病理模型组 8 64±11 67±11 66± 9
氨茶碱组 8 80± 5▲● 86± 5△● 79± 5▲○#
哮喘宁组 8 67± 8*▲ 82±12△○☆ 89±11●*☆

  注:1 mm Hg=0.133 kPa(下同);与正常组比较P<0.05,P<0.01;与病理组比较P<0.05,P<0.01;与氨茶碱组比较*P<0.05;与4小时比较P<0.05;与12小时比较P<0.05;其余P均>0.05

表3 致敏原激发后不同时间PaCO2的变化比较(±s)

组别 只数 PaCO2(mm Hg)
4小时 12小时 24小时
正常对照组 8

46±3

56±3

47±2

病理模型组 8 54±7 59±6 58±7
氨茶碱组 8 52±4 51±4▲# 53±6
哮喘宁组 8 54±3 51±6△# 51±4

  注:与正常对照组比较P<0.05,P<0.01;与病理组比较P<0.05;其余P均>0.05

表4 致敏原激发后不同时间支气管壁内EOS计数变化(±s)

组别 只数 计  数
4小时 12小时 24小时
正常对照组 8

4.20±2.31

4.9±2.6

5±3

病理组    8 20.93±3.85 53.3±6.2*● 73±6*●★
氨茶碱组   8 12.00±2.20*# 45.1±6.9*#● 68±5*●★
哮喘宁组   8 22.00±3.34*▲ 44.5±5.6*#● 60±9*#▲●★

  注:与正常对照组比较*P<0.01;与病理组比较P<0.01;与氨茶碱组比较P<0.01;与4小时比较P<0.01;与12小时比较P<0.01;其余P均>0.05

  图1 正常组4小时支气管粘膜排列规整,支气管壁内未见炎性细胞浸润,平滑肌周围偶见EOS HE ×66

  图2 氨茶碱组4小时支气管壁内及其周围有少量EOS、中性粒细胞浸润 HE ×132

  图3 示病理组12小时支气管粘膜上皮部分损伤、脱落,支气管壁内及周围有大量EOS浸润,支气管腔内可见少量炎性细胞和红细胞 HE ×66

  统计学处理:采用t检验和直线相关分析,数据用±s表示。

  结果 外周血EOS计数见表1。

  血气分析PaO2、PaCO2见表2,3。

  组织病理学检查:激发后正常组各时点支气管粘膜上皮排列规整,支气管壁内未见炎性细胞浸润,平滑肌周围偶见EOS。

  激发后4小时,病理组支气管壁内及其周围即可见有少量EOS、中性粒细胞浸润。

  激发后12小时,病理组支气管壁内及周围肺组织可见大量EOS浸润,部分支气管粘膜上皮脱落、中断,粘膜轻度水肿,腔内可见少许炎症细胞,局部肺泡轻度萎陷及扩张,肺泡隔内可见有少量出血和浆液渗出。

  激发后24小时,EOS浸润更为显著,粘膜水肿加重,局部肺泡萎陷及局灶性肺气肿,出血和浆液渗出较前更为严重,支气管腔内仍可见少量的炎性细胞。

  氨茶碱组于激发后4、12小时 EOS浸润程度较病理组明显减轻,哮喘宁组则于激发后12、24小时较病理组明显减轻,但两组各时点EOS浸润程度仍未恢复到正常组状态(图1~6)。

  高倍镜下,每只豚鼠组织切片随机选取5个小支气管,分别对各组激发后3个不同时点组织切片中小支气管壁内EOS计数(不包括管腔内的EOS),然后求其平均数,结果见表4。

  病理组24小时豚鼠外周血EOS计数、气道内EOS浸润程度及PaO2相关性分析表明,病理组24小时豚鼠(8只)外周血EOS计数为(0.26±0.05)×109/L,与气道内EOS(71. 75±7.91/气道)浸润程度呈显著性正相关(r=0.89,P<0.01);外周血及气道内EOS与PaO2(6±9) mm Hg均呈显著性负相关(r=-0.73,P<0.05;r=-0.86,P<0.01)。

  图4 示哮喘宁组12小时支气管粘膜上皮有少量脱落,支气管壁内及周围可见少量EOS浸润 HE ×132

  图5 示病理组24小时支气管粘膜部分损伤、脱落、中断,粘膜水肿、支气管壁内及周围可见大量EOS浸润,支气管腔内可见少量脱落的上皮细胞和EOS HE ×132

  图6 示哮喘宁组24小时支气管粘膜上皮有少许脱落,支气管壁内及周围有较多EOS浸润,支气管腔内有少许脱落的上皮细胞及炎性细胞 HE ×132

  讨论 支气管哮喘是气道慢性炎症性疾病,以气道高反应性(AHR)和可逆性气道阻塞为主要临床特征,支气管粘膜的慢性非特异性炎症是哮喘发病的病理学基础,是导致气道高反应性、支气管痉挛的主要原因[1]

  在其炎症过程中有多种炎性细胞参与,但目前认为大多数细胞最终通过EOS而产生效应,EOS是哮喘气道炎症的主要效应细胞[2]。因此,有将哮喘称之为“慢性嗜酸细胞性支气管炎”[3]

  本组实验表明,致敏豚鼠激发后其气道的病理学特征主要表现为以EOS为主的炎症细胞浸润,且浸润程度与致敏原激发后的时间有关,其中EOS以激发后24小时浸润最为明显,此结果符合哮喘气道的病理改变[4],也与Hutson等[5,6]的报道一致。

  对过敏原激发后不同时间外周血EOS计数的同步观察,发现外周血EOS计数亦于致敏原激发后4小时开始升高,24小时达到最高峰,与气道壁内EOS浸润程度呈显著性正相关,二者均与PaO2呈显著性负相关。

  通过提前给予哮喘豚鼠氨茶碱和“哮喘宁”煎剂灌胃,发现二者无论对外周血EOS计数或气道内EOS浸润均有不同程度降低或减轻的作用。二者的区别在于氨茶碱起效较快,但持续时间较短,哮喘宁虽起效不如氨茶碱迅速,但持续时间较长,于致敏原激发后24小时对气道壁内EOS浸润仍有显著性抑制作用。

  本组研究结果表明,“哮喘宁”煎剂能够降低外周血EOS计数,从而减少了EOS向气道内募集的可能性;更重要的是,“哮喘宁”煎剂能够直接抑制EOS在气道内的浸润,从而减轻了EOS所释放的毒性蛋白对气道上皮和肺组织的损伤以及AHR的形成,因而可能具有抗气道炎症作用。

  参考文献

  1 Djukanovic R, Roche WR, Wilson JW, et al. Mucosal inflammation in asthma. Am Rev Respir Dis, 1990,142:434-457.

  2 Busse WW, Calhoun WF, Sedgwick JD, et al. Mechanism of airway inflammation in ast hma. Am Rev Respir Dis,1993,147∶20-24.

  3 Barnes PJ.A new approach to the treatment of asthma. N Engl J Med, 1989, 321:1517-1527.

  4 Holgate ST. The 1992 cournand lecture. asthma: past, present and future. Eu r Respir J, 1993, 6:1507-1520.

  5 Hutson PA, Varley JG,Sanjar S, et al. Evidence that neutrophils do not participate in the late-phase airway response provoked by ovalbumin inha lation in conscious sensitized guinea pigs.Am Rev Respir Dis,1990,141:535-539.

  6 Tarayre JP, Aliaga M, Barbara M, et al. Theophylline reduces pulmonary eosinophil ia after various types of active anaphylactic shock in guinea pigs.J Pharm Pharmacol, 1991,43:877-879.

收稿:1999-01-04

  修回:1999-04-29


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