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肺癌组织9p21区域杂合性缺失和p16基因异常的分析*

肺癌组织9p21区域杂合性缺失和p16基因异常的分析*

  中国肿瘤临床1999年第26卷第7期

王兴元 孙燕 李卫东 王秀琴 程金科 吴旻

   摘 要 目的:研究肺癌组织9p21杂合性缺失和p16基因的变化。方法:49例肺癌组织和相应的16例转移性肺门淋巴结RNA进行RT-PCR和SSCP分析,对其中38例肺癌组织DNA进行杂合性缺失分析(9S171和IFNA两个位点)。结果:9p21区域杂合性缺失频率:47.3%(18/38)。D9S171和IFNA位点杂合性缺失频率分别为:26.3%(10/38)和36.8%(14/38)。原发灶和转移性肺门淋巴结p16基因cDNA缺失率分别为:36.7%(18/49)和56.2%(9/16),两者统计学无显著差异。p16基因cDNA缺失率在低分化组高于中或高度分化组,两者具有显著性差异(P<0.05)。p16基因表达缺失可能是早期事件p16基因异常的肿瘤细胞具有更加恶性的表型和行为,p16基因突变在肺癌发生、发展中不是主要的失活机制。

   关键词:肺癌9p21 杂合性缺失 p16表达

  肺癌组织频繁发生9p21的缺失[1]。1993年,Serrano[2]等在9p21区域发现一种新的抑癌基因,命名为p16,此基因编码16KD蛋白质。此蛋白可与CDK4和CDK6结合,抑制细胞进入S期,从而抑制细胞增殖,我们对49例肺癌组织和16例相应的转移性肺门淋巴结标本进行9p21杂合性缺失和此区域中抑癌基因-p16基因变化的分析,以期发现可能在临床应用的价值。

  1 材料与方法

  1.1临床资料

  1996年11月~1997年2月中国医学科学院肿瘤医院49例手术切除的肺癌新鲜标本及16例相应转移性肺门淋巴结标本(其中4例小细胞肺癌和45例非小细胞肺癌)及相应的38例外周血标本,即置于液氮冻存。采用Trizo(GIBCO/BRL公司)提取总RNA。RNA-70℃冻存。38例肺癌组织及外周血标本,经常规蛋白酶K消化,酚-氯仿-异戊醇抽提。

  1.29p21杂合性缺失分析

  位于9p21的微卫星序列标志D9S171和IFNA(均购自ResearchGeneticsInc.)按文献[5]的方法进行PCR反应,8%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,银染观察结果[3]。将肿瘤组织标本与其相应的外周血DNAPCR结果同时上样比较,若肿瘤的某一等位基因条带消失或相对密度减少50%以上,则记录为杂合性缺失;不同位点间杂合性缺失的差异采用χ2检验。

  1.3RT-PCR

  取1mg总RNA用SuperScript(GIBCO/BRL)试验盒进行逆转录反应;取1mlcDNA,分别加不同的引物,镁离子浓度1.5mmol/L,2.5mmol/L4×dNTPs,1UTaqDNA聚合酶,扩增p16基因时,反应体系中DMSO浓度为6%。为保证逆转录效率和确定cDNA的完整性,将β-actin做为参照。95℃预变性3分30秒,94℃50秒,55~62℃1分,72℃1分,35个循环后72℃延伸5分。将PCR产物10ml上样于1.5%琼脂糖凝胶(EB染色),紫外线灯下观察电泳结果,拍照。引物序列:

  β-actin:(F)5′CGTCTGGACCTGGCTGGCCGCGACC3′;(R)5′CTAGAAGCATTTGCGGTGGACGATG3′;

  p16(F):5′-ATGATGATGGGCAGCGCC-3′,(R):5′CGAGGTTTCTCAGAGCCT-3′。

  1.4SSCP

  RT-PCR方法同前,PCR产物5ml加1ml变性上样缓冲液,95℃5分预变性,立即置于冰浴。其后将6ml产物上样于6%~8%非变性聚丙酰胺胶(含或不含10%甘油)。电泳条件:8W或20W,4℃或25℃,6~8小时。电泳后,进行银染拍照。

  1.5统计学处理

  采用χ2检验,确定样本差异。

  2 结果

  2.1肺癌原发灶9p21杂合性缺失与不同组织类型,分化程度的关系(附表,图1)

附表 肺癌组织和转移性肺门淋巴结9p21区域杂合性缺失和p16基因表达的分析

类别

9p21杂合性缺失

p16基因cDNA缺失

例数

例数(%)

例数

例数(%)

原发灶

38

18(47.3)

49

18(36.7)

小细胞肺癌

3

1(33.3)

4

1(25.0)

非小细胞肺癌

35

17(48.6)

45

17(37.8)

肺鳞癌

16

5(31.2)

21

7(33.3)

肺腺癌

10

7(70.0)

13

6(46.2)

肺泡癌

6

4(66.7)

7

3(42.9)

肺腺鳞癌

3

1(33.3)

4

1(25.0)

转移性肺门淋巴结

16

未做

16

9(56.2)

图1 9p21区域LOH分析A:9S171位点B:IFNA位点T:肿瘤DNAB:外周血淋巴细胞DNA

  9p21区域杂合性缺失频率:47.3%(18/38)。D9S171位点杂合性缺失频率为26.3%(10/38),IFNA位点杂合性缺失频率为36.8%(14/38)。1/3例(33.3%)小细胞肺癌出现IFNA位点杂合性缺失。17/35例(48.6%)非小细胞肺癌发生9p21的杂合性缺失。非小细胞肺癌中,中度或高度分化组中杂合性缺失频率(36.8%,7/19例)低于低分化组(60%,6/10例)。

  2.2p16基因外显子2-3表达与组织类型分化程度的关系(附表,图2)

  a.M:PBR322DNA/HinfIdigest分子量标准

  1-7:肺癌肿瘤组织标本箭头所示:β-actincDNA片段大小为600bp

  作为p16基因逆转录的参照

  b.M:PBR322DNA/HinfIdigest分子量标准

  1-7:肺癌肿瘤组织标本箭头所示:p16exon2-3cDNA片段大小为350bp

  标本2、5-7表达缺失

图2 p16基因外显子2-3片段表达分析

  转移性肺门淋巴结p16基因外显子2-3cDNA缺失率(56.2%,9/16)高于原发灶缺失频率(36.7%,18/49),两者无统计学差异。p16基因cDNA缺失率在非小细胞肺癌低分化组(8/13例,61.5%)明显高于中或高分化组(6/25例,24%),两者具有显著性差异(P〈0.05)。

  2.39p21杂合性缺失和p16基因cDNA缺失率与临床分期和吸烟史的关系

  9p21杂合性缺失率:非小细胞肺癌,Ⅰ、Ⅱ期为57%(12/21例),Ⅲ、Ⅳ期为58%(7/12例);小细胞肺癌局限期0/2例,广泛期为1/1例。p16基因cDNA缺失率:非小细胞肺癌,Ⅰ、Ⅱ期为40%(12/30例),Ⅲ、Ⅳ期为38%(5/13例)。小细胞肺癌局限期:0/3例,广泛期为1/1例。吸烟组中9p21杂合性缺失率和p16基因cDNA缺失率分别为:55.6%(10/18例)和41.7%(10/24例);非吸烟组中9p21杂合性缺失和p16基因cDNA缺失率分别为:53%(9/17例)和36.8%(7/19例)。在合并肺门淋巴结转移组中9p21杂合性缺失率(10/19例,52%)和p16cDNA缺失率(43.5%,10/23例)虽高于无肺门淋巴结转移组(43.8%,7/16例;34.7%,8/23例),两者无统计学差异。

  2.4肺癌患者1年生存率随访

  随诊49例中45例肺癌患者,9例肺癌患者死亡,其中4/9例(44%)出现p16基因cDNA缺失。

  2.5SSCP结果

  不同电泳条件下均未发现变异迁移带。

  3 讨论

  染色体9p21不仅在非小细胞肺癌,而且在小细胞肺癌均是主要的缺失区域[4]。本实验结果显示,18/38例(47.3%)肺癌原发灶出现9p21杂合性缺失。9S171与IFNA位点二者相距4cm,p16基因正位于两者之间。p16基因着丝粒侧的D9S171位点杂合性缺失频率:26.3%(10/38),p16基因端粒侧的IFNA位点杂合性缺失频率:36.8%(14/38)。其中1/3例(33.3%)小细胞肺癌发生IFNA位点的杂合性缺失,而17/35例(48.6%)非小细胞肺癌发生一个或二个位点的杂合性缺失。本实验结果显示IFNA杂合性缺失频率较高,提示可能影响p16基因的结构和功能。本实验结果与先前文献报道比较[5],9p21区域杂合性缺失发生率较低,推测可能由于新鲜肿瘤标本有部分正常组织细胞混杂,从而影响杂合性缺失分析结果。采用显微切割技术,有助于提高杂合性缺失的检出。

  p16基因第2外显子是主要的缺失和发生突变的位点。先前报道中,肺癌组织p16基因突变率仅为0~8%[6]。本实验采用SSCP方法,检测p16基因外显子2-3cDNA片段,在不同的电泳条件下未发现变异迁移带。由于>90%p16基因突变发生于外显子2以及SSCP方法和假阴性发生率〈10%,因而SSCP结果提示p16基因突变在肺癌的发生、发展中可能是少见的事件。

  49例肺癌组织和16例转移性肺门淋巴结RNA的RT-PCR结果显示:18/49例(36.7%)原发灶和9/16例(56%)转移性肺门淋巴结出现p16基因exon2-3表达缺失。其中1/4例(25%)小细胞肺癌和17/45例(37.8%)非小细胞肺癌发生p16基因失表达。p16基因异常失活主要发生于非小细胞肺癌,p16基因失活主要发生于具有野生型Rb的肿瘤类型中[7]。本实验1例小细胞肺癌出现p16基因失表达是否属于具有野生型Rb基因尚需进一步研究。本实验显示发生9p21区域杂合性缺失的18例肺癌组织中有13例(61%)发生p16基因失表达。这个结果提示,9p21区域可能有其他抑癌基因的存在。

  p16基因异常在肺癌的发生、发展过程中,是早期事件抑或晚期事件[8]。本实验同时分析相应的16例转移性肺门淋巴结RNA,9/16(56.2%)例p16基因失表达,高于原发灶p16基因表达缺失率,然两者统计学无显著性差异,而且p16基因失表达与临床分期无关,提示p16基因表达缺失可能为早期事件,p16基因失表达率在低分化组明显高于高或中度分化组,两者具有显著性差异,提示p16基因异常的肿瘤细胞亚群具有更加恶性的表型和行为。推测p16基因表达缺失的原因可能是p16基因纯合性缺失和p16调控区的甲基化,影响p16基因的表达。

  RT-PCR从转录水平分析p16基因的表达水平,能反映p16基因调控区CpG岛甲基化对p16基因转录水平的影响,较免疫组化方法具有灵敏度的特点。结合微卫星DNA序列分析能较好反映基因组p16基因的变化。同时也不应忽视肺癌组织标本中有正常组织细胞存在,可能对RT-PCR结果分析有影响,影响p16基因失表达的检出。

  对45例患者1年生存率的随访,9例死亡,其中4/9例(44%)死亡患者出现p16基因cDNA缺失,而12/36例(33%)生存患者出现p16基因cDNA缺失,p16基因异常是否可做为预后不良的生物学标志,尚需进一步扩大样本,进一步对患者进行3年、5年生存率的研究。

  *本文课题受国家攀登计划项目基金资助

  作者单位:王兴元 孙燕 中国医学科学院中国协和医科大学肿瘤研究所肿瘤医院内科(北京市100021)

  王秀琴 程金科 吴旻 李卫东 分子肿瘤学国家重点实验室

  李卫东 美国宾夕法尼亚州立大学医学院

参考文献

  1 Merlo A,Gabrielson E,Askin F,etal.Frequent loss of chro-mosome 9 in human primary non-small cell lung cancer.Cancer Res,1994;54:640

  2 Serrano M,Hannon GJ,Beach D,et al.A new regulatory motif in cell-cycle control causing specific inhibition of cyclin D/CDK4.Nature(London),1993;366(6456):704

  3 朱丹,王亮,吴.应用PCR-SSCP银染技术检测食管癌p53基因点突变.中华医学遗传学杂志,1994;11:354

  4 Sidransky D.Importance of chromosome 9p loss in human lung cancer(editorialcomment).J Natl Cancer Inst,1995;87:1201

  5 Kim SK,RoJY,Kemp BL,et al.Identification of three distinct tumor suppression loci on the short arm of chromosome in small cell lung cancer.Cancer Res,1997;57:400

  6 Rusin MR,Okamoto A,Chorazy M,et al.Intragenic mutations of the p16INK4A,p15INK4B and p18 genes in primary non-small cell lung cancers.Int J Cancer,1996;65:734

  7 Otterson GA,Kratzke RA,Coxon A,et al.Absence of p16INK4A protein is restricted to the subset of lung cancer lines that retains wild type Rb.Oncogene,1994;9:3375

  8 Papadimitrakopoulou V,Izzo J,Lippman SM,et al.Frequent in activation of p16INK4a in oral premalignant lesions.Oncogene,1997;14(15):1799


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